多聚赖氨酸的配置、保存、使用

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1、多聚赖氨酸的配置、保存、使用一、常用的多聚赖氨酸包被可以用三蒸水，或者PBS,浓度一般为用0.1 mg/ml进行包被。二、其他常用包被方法比较（以各种免疫分析为例）：.snap三、我配成lmg/ml的储存液，用MiniQ（超纯水）配制，放在一20C储存， 使用时稀释10倍（也用超纯水），即终浓度100ug/ml,过滤后使用。工作液过 滤使用，如一次用不完，放在4C储存。多聚赖氨酸在水溶液中易分解，所以一次不要配太多工作液。四、我现在要配多聚赖氨酸，书上写的用PBS配,但没写PH,浓度，向各位请 教。答：PH应该在707.4, PBS：取氯化钠7.650 g,无水磷酸氢二钠0.724 g,磷酸二

2、氢钾0.210g溶于蒸憎水1000 mL中，以1N氢氧化钠溶液调pH值为707.4,经121C灭菌15分钟五、我准备用多聚赖氨酸涂片培养细胞，不知道多聚赖氨酸涂过的玻片如何 灭菌？能否干烤灭菌？答：Sigma的产品说明书上写的很xx的。另外，有本书上是这么写的，供参考：Poly-lysine-coated tissue culture surfacesTo coat coverslips:Prepare a stock solution by dissolving 25 mg/ml polysine in4.73 ml water (both poly-L-lysine and poly-D-

3、lysine are used to coat tissue culture surfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize through a0.22-|imfilter. Store in 100-plaliquots at?20C. When ready to use, dilute one aliquot in 40 ml water to prepare 13|ig/mlworki ng soluti on .Sterilize coverslips by autoclavi n

4、g prior to coati ng. Dip coverslips in the working solution, then incubate 15 min to several hours in a humidified 37C, 5% CO2 incubator. Allow surface to dry.To coat culture dishes or 8 well chamber slides:Prepare a stock solution by dissolving 100 mg poly-lysine in 100 ml water (both poly-L-lysine

5、 and poly-D-lysine are used to coat tissue culturesurfaces; check specific protocol for choice of isomer) and filter sterilize through a0.22-|imfilter.Store in 5-ml aliquots at ?20C. When ready to use, dilute 1 part stock solution with 9 parts waterto prepare lOOng/mlworking solution. Fill tissue cu

6、lture dishes or slide wells with the working solution and incubate 1 hr in a humidified 37C, 5% CO2 incubator, then remove solution by vacuum aspiration and allow surface to dry.Store coated tissue culture ware up to 3 mon ths at 4C Use diluted solutions only once, but unused diluted aliquots can be

7、 stored up to 3 months at 4C你可以配置好PLL后单独将其过滤除菌，分装，待用。玻片也是事先泡洗 洁精，泡酸，双蒸水洗，烘干后高压灭菌，待用。培养的前一天包被培养板时 先把玻片放入培养孔然后把PLL加到玻片上，静置15分钟，洗出多余的PLL, 然后用高压过的双蒸水洗板，培养板放入37度烘箱里过夜就可以用了。六、多聚赖氨酸消毒该怎么办？ ？答：紫外照射消毒我没试过，但用0.22um的滤器消毒是没问题的（小的一次性滤器可以过滤200ml）o在液体 消毒时，如果所含成份经过高温，钻60照射发生变性者，建议用滤器（0.22）,多聚赖氨酸为氨基酸类，建议用滤器，如果要求程度高，

8、可以两个 滤器过滤两次。七、资料：多聚赖氨酸溶液（Poly-L-Lysine Solution） Cone.:0.1% w/v, in water Storage:18-26CThimerosal,0.01%, added as preservative多聚赖氨酸溶液是广泛应用的组织切片与玻片 黏合剂，该多聚阳离子分子与组织切片上的阴离子相互作用会产生较强的黏合 力。适用组织学，免疫组织化学，冰冻切片，细胞涂片，原位杂交等使用的玻 片的防脱片处理，以防实验操作过程中组织掉片。也可用于细胞培养，增加细 胞贴壁能力。八、使用说明操作步骤(可直接在玻片上涂布)1灭菌的ddH20 1:10稀释该多聚赖

9、氨酸溶液。2用之前将稀释的多聚赖氨酸溶液放在室内，使其温度到室温18-26C3将玻片浸在稀释的多聚赖氨酸溶液5分钟。注意增加时间不会提高包被效 果。4在60C烘箱1小时干燥，或室温1826C过夜干燥待用。九、注意事项1 每100mL已稀释的多聚赖氨酸溶液要包被的玻片40-90张，超过90张片 子将影响其黏合力。2用之前的玻片必须保持清洁。必要时用含1% HCI的70%乙醇溶液来清 洗。3不要在用过的稀释液xx新的溶液。4释过的多聚赖氨酸溶液要放在2-8C,至少在3个月内是稳定的。5用过的稀释液要过滤，若出现浑浊或长菌要丢弃。十、将0.5%多聚赖氨酸溶液加入细胞培养皿中，浸泡5-10分钟并自然晾

10、干待用即 可。十一、多聚赖氨酸(poly-1-lysine)：常用包被培养皿的基质之一。1 配制硼酸缓冲液(PH8.4)A液：硼砂溶液一一1.907g溶于100ml三蒸水(0.05M)B液：硼酸溶液1.237g溶于100ml三蒸水(0.2M)4.5mlA 液 +5.5mlB液=硼酸缓冲液(PH8.4)2多聚赖氨酸5mg溶于50ml硼酸缓冲液中，配成100kg/ml的多聚赖氨酸 溶液。过滤除菌，一20度保存。3使用时4倍稀释，可以重复使用3次！十二、听说一般买来的多聚赖氨酸都是用了做免疫组化时用的，一般都加 了防腐剂，不利于细胞培养。所以我以前都是自制鼠尾胶原。请教midas主 任，不知道这种说

11、法是否正确？答：我不知道别的地方PLL的来源，不过我们这里是sigma的粉剂，而且注明是 for cell cultureo如果多聚赖氨酸屮有防腐剂那么肯定不适合细胞培养！十三、一些参考书上有的用三蒸水，有的用PBS配置，这与你说的很有出 入，是不是三种配法都可以？不知道那一种更合理些？答：其实都可以，不过这是推荐的方法！（用硼酸缓冲液）十四、主任，按照您的配方，多聚赖氨酸的使用浓度应该是0.025mg/ml,目前我们实验室的使用浓度是O.lmg/ml,这个浓度来源于上海脑所.我想请问一下，我们用的浓度是否 偏高，我培养的是大鼠星形胶质细胞，如果用您推荐的浓度，细胞是否容易贴 壁.谢谢！答：有

12、些文献上也是用的O.lmg/ml,但是我们在实际工作中用O.O25mg/ml是完全可以的。方法是至少包被4h以上，过夜也可以（可重复用3次）！之后无菌水清 洗，晾干后即可使用。用于配养细胞的多聚赖氨酸分子量要求70,000, 一般常见的分子量有 70,000150,000, 150,000300,000和300,000,分子量越大，黏附力越强，但 相对完全溶解较困难，所以我推荐使用150,000300,000比较好。多聚赖氨酸的工作浓度各家文献报道相差很大，从0.25 mg/ml 至【J0.01mg/ml都有，因为多聚赖氨酸对细胞有毒性，所以在保证贴附的前提 下，浓度越低越好，还省钱。我现在用

13、的是0.01mg/mlo多聚赖氨酸的配制浓度在各个书上不一，我也在做原位杂交，浓度是0.01mg/ml比较好吧十五、请问多聚赖氨酸(1500一3000)如何配置？保存？工作浓度？答：多聚赖氨酸应该是避光保存的我们实验室使用的方法如下，希望对你有用：多聚赖氨酸(Poly-L-Lycine,PLL)试剂：多聚赖氧酸5g蒸憎水1000ml配制方法：称取PLL,溶于H2O,充分混合即可，此液浓度为0.5%,可适当稀释配成0.01 0.5%浓度。4C保存，也可20C备用。PLL可反复冰冻，效果无明显影响， 工作液常再稀释1050倍。我的使用方法如下：先配制成10mg/ml的浓缩液，使用前按照1： 80稀

14、释，制成工作液，浓度 25ug/ml,可用于包被培养皿。十六、各位老师，有几个关于多聚赖氨酸包被培养板的问题请教1、pH到底溶于硼酸缓冲液还是溶于三蒸水或双蒸水2、使用前是用灭菌的去离子水稀释吗，可不可以用双蒸水或别的答：多聚赖氨酸溶于硼酸缓冲液或者无菌培养用水；多聚赖氨酸包被培养板使用前是用灭菌的去离子水稀释，最好不要用双蒸 水或别的，因为多聚赖氨酸包被的原理是通过改变器皿表面的电荷而促进细胞 的黏附。十七、请问：多聚赖氨酸包被培养板和培养瓶时，该注意什么问题？答：我的方法是：浓度为50ng/lml的多聚赖氨酸，加入培养板或培养瓶能均匀覆盖底部就 可，放置在无菌操作台中过夜。第二天早上用时先

15、用双蒸水冲洗三遍再用。十八、我的问题是多聚赖氨酸可以在培养瓶中放多长时间，太长了会有影 响吗？答：我曾用过多聚赖氨酸包被培养瓶，但浓度是O.lmg/ml,我都是放一夜，第二天吸掉晾干就甩当然要紫外消一下我觉得时 间长点没什么大碍。我们这里的老师说，多聚赖氨酸不能用紫外线照射。1用赖氨酸包被培养板和培养瓶时，应该选用多聚左旋赖氨酸（分子量为15- 30 万）；2感觉你浓度为50ng/lml有些低，我一般最后多聚赖氨酸使用浓度达到 20 30ug/ml；3包被时间一般为6-7h,或者过夜也可;4使用时应该先用灭菌水洗三次+ PBS （起平衡盐作用）洗一次，洗液的量 应该大于包被液的量；5多聚赖氨酸

16、可以在培养瓶中放多长时间，太长了会有影响吗？ ，我包被 时间最长的经历有过48h,最后只是多聚赖氨酸随着时间延长蒸发一些而量变少 了，但是对细胞生长并无大碍，这是我曾经有过的经历，所以我会负责地告诉 你；6多聚赖氨酸能在4度冰箱里放多久？，最好置于一20度保存，放置数 月乃至半年都可以。我问过博士德公司，他们分装的多聚赖氨酸是用来作免疫组化的，没有做 过细胞培养实验，他们不保证能否用在细胞培养中，建议你买其他公司的吧， 有固体的，分子量为1530万，我们实验室用浓度0.01%的来促进神经细胞贴壁。我们用的多聚赖氨酸浓度为100ug/ml,一般包被3-4小时即可用我们包被完 后一般放在培养箱里，

17、临用时拿出来洗三次，吹干即可.如果不急着用，放在培 养箱里较长时间也没关系，把瓶盖拧紧即可，我最长放了 2星期也没有问题。左旋和右旋的多聚赖氨酸都可以用于包被细胞培养器具，主要看你的细胞贴 壁能力如何，左旋的更利于细胞贴壁我们一般使用0.01%浓度的，包被过夜，第二天用双蒸水洗两三次，超净台紫外照射,风干。可 以直接买sigma的原装粉剂自己配。还有，配好的多聚赖氨酸在4度时间不能放 置太久，大概就一两周吧。存放于20度中的一般为0.1%的,而且不能反复冻融，只能融化一次。最好是配好后分装。十九、多聚赖氨酸可用蒸镭水或PBS配制吗？答:可以的，我们这儿基本上都是用去离子水配制的，这几种方法效果

18、差不 多。不知道你是用来做什么的，免疫组化还是养细胞？ ihc没什么特别说明，如 果是包被瓶皿，那就要注意无菌操作，还有有些普通的多聚赖氨酸加有防腐 剂，对细胞有影响的！（注：sigma公司的产品有注明：used to coat tissue culture surfaceso 购买时要注意）如果是浸泡材料后直接接种细胞的话（多聚赖氨酸有利于细胞帖壁），我 建议你用PBS,因为PBS平衡盐，对细胞损伤小。如果配制后是用来加入培养基 的（只是作为其中的一种成份），可以用三蒸水。说明书上要求配制及存放要在塑料制品中，忌玻璃制品，用PBS稀释。二十、是否需要一次性滤器滤过一下，用前照一小时？答：我觉

19、得要是用一次性滤器滤过的东西，就不用再照了。没必要。二十一、用多聚赖氨酸包被可以减少细胞脱片，根据细胞类型而定，最好 用之。以下是我作细胞爬片时步骤：（1）多聚赖氨酸（PLL）:武汉博士德分装Sigma产品，10ml/瓶。4度存放，有效期1年。xx说明书明确指出：多聚赖氨酸一般用干净的塑料器皿，如塑料切片盒，塑料杯等稀释，而不 能用玻璃器皿稀释，以免影响效果；在1:10稀释液可以保存在4度里，三个月 内仍然可以使用。因为多聚赖氨酸对细胞有一定毒性，所以在保证贴附的前提下，尽量使用 低点儿的浓度。（2）无菌处理：PLL不可以高温消毒，故应过滤除均，分装于无菌处理的细胞冻存管内， lml/管，封口

20、模密封，4度保存。另外，准备无菌去离子水50mlo（3）配置工作液：用移液枪吸取0.3ml PLL+3ml无菌去离子水，混匀放于10ml无菌塑料离心管中。封口模 密封后4度存放。（4）玻片处理：常规处理的盖玻片，纱布“夹心饼式消毒、保存。铺片于培养皿中，移液 枪将PLL工作液滴加于玻片上，室温10分钟后，用消毒好的纱布条吸取玻片 上的PLL液。在超静台内风干后使用，或者超静台内过夜晾干，次日使用。（5）常规细胞消化，离心后爬片。如果既然细胞生长状态良好，染色时不掉片，可以不用PLL。有些细胞，如 神经元就必须要PLL包，要不细胞生长受影响，也会掉片。二十二、制备多聚赖氨酸盖玻片方法一用超纯水配

21、成母液浓度为lmg/ml的多聚赖氨酸（PolyLLysine）,分装好 以后20度保存，用的时后再冻融。方法：1吸取约0.25ml滴在无菌的盖玻片上过夜，使多聚赖氨酸粘附在盖玻片上。2第二天吸去多余的多聚赖氨酸溶液，把盖玻片依次经去离子水、Tyrode 溶液和去离子水浸洗两次。3空气干噪并用紫外灯照射15分钟后即可使用（不要求无菌的话操作可简 单一些）。二十三、制备多聚赖氨酸盖玻片方法二自来水浸2h,浸酸过夜，自来水冲洗干净，95%乙醇浸12h,70度烤干，高 压处理，涂一层多聚赖氨酸(0.025mg/ml),室温包被4h, DD水冲洗10遍，无水乙醇冲洗，超净台风 干。盖玻片易碎，处理时动作

22、要轻，还有一次多处理一点，备用。1多聚赖氨酸不能高压灭菌，本身就是氨基酸，高压会破坏它的成分。2多聚赖氨酸可以紫外照射，包括国外的文献，都说过用之前用紫外照射。3 做Z前要先把游离的多聚赖氨酸洗去。综观上述，有个别细节问题大家的建议好像不太统一或者我没有找到答案：1 能否紫外照射铺好多聚赖氨酸的板子？右战友提到：不能。其他很多战友提到除过滤外使用紫外灭菌。2 配好的存储液能否反复冻融？右战友提到：多聚赖氨酸在水溶液中易分解，所以一次不要配太多工作液。战友提到：不能反复冻融。没有看到明确说反复冻融无影响的。xx赛xx生物科技有限公司tel： , xx聚赖氨酸作为新型的天然防腐剂，已于2003年1

23、0月被FDA批准为安全食品保鲜剂。聚赖氨酸的性质1977年日本学者S. Shima和H. Sakai在从微生物中筛选 DragendoPositive（简写为DP）物质的过程中，发现一株放线菌No. 346能产生 大量而稳定的DP物质，通过对酸水解产物的分析及结构分析，证实该DP物质 是一种含有25-30个赖氨酸残基的同型单体聚合物，称为多聚赖氨酸（ 一 PL）o聚赖氨酸的理化性质聚赖氨酸为淡黄色粉末、吸湿性强，略有苦味，是赖氨酸的直链状聚合 物。它不受pH值影响，对热稳定（120C, 20min）,能抑制耐热菌，故加入后可 热处理。但遇酸性多糖类、盐酸盐类、磷酸盐类、铜离子等可能因结合而使活

24、 性降低。与盐酸、柠檬酸、苹果酸、甘氨酸和高级脂肪甘油酯等合用又有增效 作用。分子量在3600-4300之间的&聚赖氨酸其抑菌活性最好，当分子量低于 1300时，“聚赖氨酸失去抑菌活性。由于聚赖氨酸是混合物，所以没有固定的 熔点，250C以上开始软化分解。 一聚赖氨酸溶于水，微溶于乙醇。对其表征 进行红外光谱分析表明：在 16801640cm -1 和 1580-1520cm-l 有强吸收峰。聚赖氨酸的生物学性质聚赖氨酸是一种具有抑菌功效的多肽，这种生物防腐剂在80年代就首次 应用于食品防腐。聚赖氨酸能在人体内分解为赖氨酸，而赖氨酸是人体必需的8种氨基酸Z 一，也是世界各国允许在食品中强化的氨基酸。因此一聚赖氨酸是一种营养 型抑菌剂，安全性高于其他化学防腐剂，其急性口服毒性为5g/kgo聚赖氨酸 抑菌谱广，对于酵母属的尖锐假丝酵母菌、法红酵母菌、产膜毕氏酵母、玫瑰 掷孑包酵母；革兰氏阳性菌屮的耐热脂肪芽砲杆菌、凝结芽孑包杆菌、枯草芽砲杆 菌；革兰氏阴性菌中的产气节杆菌、大肠杆菌等都有明显的抑制和杀灭作用聚 赖氨酸对革兰氏阳性的微球菌，保加利亚乳杆菌，热链球菌，革兰氏阴性的大 肠杆菌，沙门氏菌以及酵母菌的生长有明显抑制效果，聚赖氨酸与醋酸复合试 剂对枯草芽胞杆菌有明显抑制作用。