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1、细胞增殖-毒性实验步骤1、细胞传代、细胞计数、细胞增殖-毒性实验步骤：实验准备：用75%酒精擦生物安全柜台面2遍，紫外线消毒30分钟（枪、枪头、15ml及50ml离心管、剪刀、封口膜、记号笔、打火机、酒精灯、培养瓶），复温实验所需试剂细胞培养液（DMEM、1640）、磷酸缓冲盐溶液（PBS）、胰酶（0.25% Trypsin-EDTA）、胎牛血清（FBS）、双抗，所有的试剂、仪器放入生物安全柜前要用酒精喷洒消毒。显微镜下看细胞生长状态，有无污染。1）倒去培养瓶内的培养液；2）加入PBS 2ml洗涤培养瓶内细胞2次；3）加入胰酶500ul/0.5ml 210min（具体时间因细胞而异，可在显微镜
2、下看是否贴壁，必要时轻拍培养瓶促使细胞脱落）；4）加入含10%FBS的培养液11.5ml培养液：胰酶=（23）:1中和胰酶；5）轻轻吹打成单细胞悬液，吹打力度以不起气泡为宜；6）将单细胞悬液吸入1015ml离心管中，低速离心800rpm 3分钟，倒去上清液；7）加入含10%FBS细胞培养液12ml吹打悬浮细胞至单细胞悬液；8）吸取20ul细胞悬液（10ul细胞悬液+10ul台盼兰液：给坏死细胞染色，判断细胞活力）至细胞计数板，进行细胞计数；CCK-8实验：9）在96孔板中，给每孔加100L（约7000个）的细胞悬液，将培养板放在培养箱预培养24-72小时（37，5%CO2），使细胞贴壁；10）
3、向培养板中加入10L不同浓度（5、10、20、40、80、160ug/ml）的待测药物；11）将培养板在培养箱孵育一段适当的时间24小时（例如：6、12、24或48小时）（药物起作用）；注意：如果待测物质有氧化性或还原性的话，可在加CCK之前更换新鲜培养基（除去培养基，并用培养基洗涤细胞两次，然后加入新的培养基），去掉药物影响。当然药物影响比较小的情况下，可以不更换培养基，直接扣除培养基中加入药物后的空白吸收即可。12）向每孔加入10L（约10%）CCK-8溶液（注意不要再孔中生成气泡，它们会影响OD值的读数）；13）将培养板在培养箱内孵育14小时（半小时测一次OD值）；14）用酶标仪测定在450nm处的吸光度。15）若暂时不测定OD值，可以向每孔中加入10L0.1M的HCL溶液或者1%w/vSDS溶液，并遮盖培养板避光保存在室温条件下24小时内测定，吸光度不会发生变化。测定待测定药物（6个浓度）对肺癌A549细胞增殖的影响，实验加样（最外围的36孔加PBS液，实际上可用60个孔）：分组浓度（ug/ml）实验组A加药GO-CHI-HA-SNX-2112细胞+培养基+药物+CCK-8510204080160A0加药细胞+培养基+CCK-8，无药物A空白培养基+CCK-8，无细胞、药物可不做药物+培养基+CCK-8，无细胞
细胞增殖-毒性实验步骤CCK
