溶液配制(个人总结)

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1、溶液配制LB固体培养基(液体培养基不加琼脂)胰蛋白胨 1g酵母提取物 0.5gNaCl 1g琼脂 1.6g加蒸馏水水容至100 mL,摇动容器直至溶质溶解,用5mol/L NaOH调pH至7.0,在15psi高压下蒸汽灭菌20min. (1.05kg/cm3)。一定要在温度降下之前加好抗生素,并且倒好板。LB固体培养基倒板 1.配制:100ml LB培养基加入1.5g琼脂粉 2.抗生素的加入:高压灭菌后,将融化的LB固体培养基置与55的水浴中,待培养基温度降到55时(手可触摸)加入抗生素,以免温度过高导致抗生素失效,并充分摇匀。 3.倒板:一般10ml倒1个板子。培养基倒入培养皿后,打开盖子,

2、在紫外下照10-15分钟。 4.保存:用封口胶封边,并倒置放于4保存,一个月内使用。琼脂糖凝胶H2O 50 ml50TAE 1 ml琼脂糖 0.5 gEB 2.5 ul(胶不热时加入)微波炉加热30 s,倒入制胶盒。D-PBS杜氏磷酸盐缓冲液(Dulbeccos Phosphate Buffered Saline,D-PBS)也是一种磷酸盐缓冲液,与常规PBS的不同之处在于磷酸盐的含量稍低些,并含有 钙镁离子。D-PBS主要用于胚胎学方面的研究,多用于胚胎的冲洗液、冻存液和培养液。NaCl 0.8gKCl 0.02gNa2HPO4 0.115gKH2PO4 0.02gCaCl2.2H2O 0.

3、0133gMgCl2.6H2O 0.01gD-glucose 0.1g溶解至100 ml ddH2O中,过滤除菌。胰酶(0.125%)胰酶 0.25gEDTA 0.02gPBS(1) 200 ml4过夜,0.22 um微孔滤膜过滤,分装。摇菌时抗生素浓度氨苄工作浓度50 ug/mL,配50 mg/mL的,用时稀释1000倍卡那工作浓度30 ug/mL,配30 mg/mL的,用时稀释1000倍pH4.75 50 mmol/L的醋酸缓冲液(含4 mM EDTA):取27.22克NaAcH2O溶于1000 ml蒸馏水,即为0.2M NaAc,用冰醋酸配制0.2 M醋酸,然后取410 ml 0.2M

4、HAC和590 ml 0.2M NaAc混匀,测pH值调到pH4.75,然后每1000 ml溶液加入5.95g EDTA-Na2溶解即可。此溶液为200 mM pH4.75的醋酸缓冲液,EDTA为16 mM。使用时将该溶液1:4稀释(1份该溶液加3份蒸馏水)即成50 mM pH4.75 50 mmol/L的醋酸缓冲液,含4 mM EDTA。刺激缓冲液:在100 ml MEM培养基中加入IBMX 0.0111 g,加入MgCl2 6H2O 0.2033 g,70加热溶解约1 h,至无絮状漂浮物。冷却至37 备用。双抗的配制:1. 所用纯净水(双蒸水)需要15磅高压20分钟灭菌。 2.具体操作均在超净台内完成。青霉素是80万单位/瓶,用注射器加4ml灭菌双蒸水。链霉素是100万单位/瓶,加5ml灭菌双蒸水,即每毫升各为20万单位。3.使用时溶入培养液中,使青链霉素的浓度最终为100单位/ml。1单位1微克。可分别取4ml青链霉素配成混和液,这样青链霉素的浓度各为10万单位/ml,然后将8ml溶液稀释十倍,青链霉素的浓度各为1万单位/ml,用时可向培养液中加入1%的双抗,即可达到终浓度为100单位/ml.

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