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实验11染色体分带技术.ppt

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实验11染色体分带技术.ppt

实验11 染色体分带技术,一、实验目的,了解染色体分带技术的原理及应用 了解染色体G带和C带显示的原理 掌握染色体G带和C带显色技术流程,2020/7/5,1,二、实验原理,人们用物理、化学因素处理后,再用染料对染色体进行分化染色,使每条染色体上出现明暗相间,或深浅不同带纹的技术称为显带技术(banding technique)。染色带的数目、部位、宽窄和着色深浅均具有相对稳定性,所以每一条染色体都有固定的分带模式,即称带型。染色体带型是鉴别染色体的重要依据。,2020/7/5,2,二、实验原理,G带是将处于分裂中期的细胞经胰酶或碱、热、尿素等处理后,再经吉姆萨染料染色后所呈现的区带,是目前被广泛应用的一种带型。其特性是显带方法简单恒定,带型稳定,保存时间长。一般认为,易着色的阳性带为含有AT多的染色体节段,在间期核呈固缩状态,而且是DNA晚复制区之一,有相当一部分中度重复序列DNA可能在G带区;相反,含GC多的染色体段则不易着色。也有人认为,Giemsa染料在G带区是与DNA结合,而且与结合DNA的染色质非组蛋白有关。总的来说,G显带的机制还未搞清。 C带是染色体标本经强碱(NaOH或Ba(OH)2)热处理后,在着丝粒周围区域和异染色质区经Giemsa染成深色,而染色体两臂的常染色质部分仅有浅淡轮廓。这是一种染色体上不显示带纹的特殊显带法,主要显示着丝粒区和异染色质区的变化。,2020/7/5,3,二、实验原理,双翅目昆虫(果蝇、摇蚊等)幼虫期的唾腺细胞很大,其核内的染色体称为唾腺染色体。由于它们比普通染色体大100-150倍,宽约5m,长约400m,因而也称为巨大染色体。另外唾腺染色体经多次复制而不分开,所以又称作多线染色体。唾腺染色体经染色后出现深浅不同,疏密有别的横纹,且其数目和位置常常是恒定的,标志着物种的特征。,2020/7/5,4,三、实验仪器材料,洋葱、蚕豆、大蒜根尖 果蝇唾腺 1 N HCl溶液 Ba(OH)2溶液 Giemsa染液 显微镜,2020/7/5,5,四、实验步骤,2020/7/5,6,四、实验步骤,2020/7/5,7,唾腺呈半透明,球棒状,前端较细,后端粗钝,有时成对粘在一起成“V”字型,其外侧有时附有乳白或淡黄色的脂肪, 此时应保留唾腺形态的完整,因为食道和肠管也是半透明的,如果唾腺不完整,就很难判断唾腺和肠道的取弃。,四、实验步骤,2020/7/5,8,果蝇唾腺染色体制片,把唾腺剔出移到玻片的干净处,并清除其余器官和组织。如果唾腺上附有脂肪,应把乳白色或淡黄色的脂肪清除干净,保留半透明的唾腺。 把多余的生理盐水用吸水纸吸干,加一滴 1 N盐酸;室温下水解2分钟,然后吸干。 空气干燥一周,四、实验步骤,2020/7/5,9,植物根尖染色体制片,前处理:根尖用0.1%秋水仙素溶液处理412小时。 固定: 用水洗净处理过的根尖,经Carnoy固定液固定2-24小时,换入70%酒精保存。 解离: 取出根尖,用蒸馏水洗净,放入1N HCl中60解离 810min,再用蒸馏水洗净。 低渗: 倒去酶液,用蒸馏水慢慢冲洗2次,然后在蒸馏水中浸泡30 min。 后固定: 取出材料于载片,滴加新鲜Carnoy固定液,固定10-30 min 涂片:用镊子将材料捣碎,边捣边加固定液,去掉大块残渣。 空气干燥一周,四、实验步骤,2020/7/5,10,G带显色,(1)将制好的染色体标本,置7275烤箱中烤片3h。 (2)放入预温至37的0.025%胰酶溶液中(pH=7.27.4)消化1min左右,每次的作用时间并不完全相同,可先试一张片子,再根据显带效果调整胰酶作用时间。 (3)在Giemsa 染液中染色10min,自来水冲洗干净,晾干后,即可阅片。 (4)镜检:在显微镜高倍目镜下检查显带标本,在染色体上若出现清晰的深浅相间的带型,即为可取标本,可供摄像分析,四、实验步骤,2020/7/5,11,四、实验步骤,1. 制片、烤片同G显带技术(65,2小时)。 2. 染色体标本在室温下用0.1 N HCl水解15分钟后蒸馏水冲洗。 3. 2% Ba(OH)2,65处理10分钟后蒸馏水冲洗。 4. 2SSC,65处理1小时。 5. 冲洗冷却后用1:10 Giemsa稀释液染色7分钟。 6. 冲洗后晾干,镜检。,C带显色,2020/7/5,12,五、实验结果,G带显色,2020/7/5,13,五、实验结果,C带显色,2020/7/5,14,唾腺染色体显色,五、实验结果,2020/7/5,15,六、思考题,染色体显带有哪些技术? 染色体显G带的关键步骤是什么? 染色体显C带的关键步骤是什么?,2020/7/5,16,

注意事项

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