单细胞RNA测序的样本制备指南

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1、单细胞 RNA 测序的样本制备指南在开展单细胞 RNA 测序之前,我们首先要妥善地制备 单细胞样本。这虽然有点困难,但本文介绍了一些诀窍和建 议,也许对您的实验有所帮助。 这主要适用于 10 x Genomics 的 Chromium? Single Cell 3 Solutic 不过也同样适用于其他方案。 单细胞 RNA 测序( scRNA-seq )是一种强大的 工具,让研究人员能够揭开复杂的生物学系统,分析各个细 胞的基因表达动态,从而深入了解疾病发展过程中的细胞进 程。在此之前,分析混合细胞群体的基因表达一直是一项困 难的任务。当然,在开展单细胞 RNA 测序之前,我们首先要妥善地制

2、备单细胞样本。这虽然有点困难,但本文介绍了一些诀窍和 建议,也许对您的实验有所帮助。这主要适用于 10 xGenomics 的 Chromium? Single Cell 3 Solution ,不过也同样适用于其他方案。了解您的样本样本制备的具体方案因样本类型而异,但无论 采用哪种方案,您都必须要确保上样的细胞是有活力的,并 且完全解离成单细胞。无论是细胞系还是组织,优化细胞解 离的操作都是必不可少的,这样才能避免细胞死亡和裂解。 死细胞会裂解,释放出 RNA 。这种游离 RNA会增加背景噪 音,影响单细胞数据的质量。目前有不少现成的样本制备方案,但也许需要针对您的样本 类型来修改。比如,悬

3、浮细胞系、磁珠富集的细胞和流式分 选的细胞已经呈悬浮状态,只需要洗涤和计数即可。不过, 如果样本换成了组织,那就有必要精心优化解离操作,以确 保数据质量最高。另一个需要考虑的因素是不同类型的细胞在 RNA 含量上相 距甚远,而准确测定此参数将影响一些关键决定,比如文库 制备过程中的 PCR 循环数。举个例子,人外周血单核细胞(PBMC )的 RNA 含量极低,只有 0.75 pg/细胞,而 HCC38 细胞系则富含 RNA,含量达到 21.6 pg/细胞。处理也要小心移液相信大家都对自己的移液技术充满信心, 不过,在处理解离的组织或悬浮的细胞时, 还是要格外小心。 比如,当细胞静置在管中时,它

4、们开始沉降,因此每次从管 的上部或下部吸取时,有可能吸到不同数量的细胞。正确的 做法是每次移液之前先混合细胞悬液,然后从管的中部吸取。 同时,细胞必须被温柔对待。大家可能不知道,即使用宽口 径的移液吸头,移液混合也会对样本质量产生负面影响。下 图比较了在 HEK293T 细胞上开展的四种不同的细胞混合实 验对单细胞数据的影响。剧烈的移液混合和涡旋振荡都会导 致细胞过早溶解, 释放出RNA ,形成背景噪音, 最终降低细 胞的 reads 比例。正确的做法是使用宽口径的吸头来轻柔混 合细胞悬液。 洗涤在处理悬浮细胞、 解离组织或大量细胞时, 强烈建议彻底洗涤。这可以根据样本类型以及scRNA-se

5、q 方法来调整。建议的洗涤方案是用含有 0.04% BSA 的 PBS来沉淀和重悬细胞两次,然后用最终体积的 PBS 和 0.04% BSA 来重悬细胞。 过滤大的细胞团块或细胞碎片会增加微流体芯片的堵塞风 险。为了避免这种状况, 建议在上样之前使用细胞滤网 ( cell strainer ),孔径大约为 30-40 卩 m。不过需要注意的是,每次 过滤都会造成细胞悬液体积的损失以及细胞浓度的改变。因 此,如果需要过滤,在过滤之后应该对细胞重新计数。 细胞计数和活力评估在洗涤和过滤之后,我们有必要测定细 胞活力,以便评估样本质量。尽管方法很多,但简单的台盼 蓝染色方法就不错,能够鉴定出活细胞和

6、死细胞的比例。此 外,我们还需要开展细胞计数,准确了解样本中有多少个细 胞。血细胞计数器当然可以用, 不过还有更方便的计数工具, 如赛默飞的 Countess II FL 全自动细胞计数仪。 影响细胞计数准确性的一个重要因素是细胞储液的浓度。研 究发现, 细胞储液的浓度在 700-1200 个细胞/卩的范围内是 最理想的。超出这个最佳范围,可能导致细胞计数的结果不 可靠。如果样本不在这个范围内,建议相应地调整细胞储液 的浓度。 去除死细胞样本中高比例的死细胞可能会影响目标细胞的 回收率。死细胞及其他污染物的去除对获得高质量的数据至关重要。当然,样品中的死细胞比例可能差异明显,这要取 决于样本类

7、型和制备方法。对于死细胞比例较高的样本,您 可以参考 10 x Genomics的技术指南( Removal of Dead Cells from Single Cell SuspensionsImproves Performance for 10 x Genomics? Single Cell Applications )。样本保存为了尽量避免转录组的变化,在洗涤和计数之后, 单细胞的悬液应保存在冰上,等待后续的文库构建。在理想 情况下,一旦样本制备好,应尽量在 30 分钟内使用。 不过,样本在冰上具体能放多久,这也关乎到细胞类型。有 些细胞(如 PBMC )如果长时间放在冰上,就会形成团块。 这些团块很难解离,增加了堵塞芯片的风险,而且每个团队 都被当成一个细胞, 又降低了计数的精确性。 在这种情况下, 我们应当尽量缩短放置的时间。结语在制备单细胞悬液时,提前规划和精心准备是必不可少 的,因为全面考虑各种因素, 才有望获得高质量的数据。 10 x Genomics 等公司提供了单细胞样本制备的许多指导,也提 供了特定细胞类型的示范方案。如果您的研究对象难以分离 到完整细胞,则可以选择新近开发的细胞核分离方案。

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