原核表达的详细步骤

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1、原核表达详细步骤Parti选择表达的目的基因一、基因序列1. 得到靶基因DNA (cDNA)序列,有几种方式寻找正确的读码顺序: 利用生物信息学在NCBI上biast同源基因,找到同源蛋白,再在DNA的 ORF 中找到正确的读码。 实验方法,即得到蛋白,进行测序,然后在 DNA 上找到正确的读码。 利用 mRNA 的特征,找到启动子,编码区,终止子。在编码区中找到翻译起 始密码子与终止密码子( cDNA)。2. 注意事项: 区别ORF和CDS-ORF 般在DNA上的定义,寻找原则是翻译起始密码子和终 止密码子;CDS可以是DNA上的定义,也可以是mRNA上的定义,分为complete CDS

2、和partial CDS,是从第一个核酸开始读,连续读下去,complete CDS读码是 “M、”, partial CDS 的读码是相应的 AA 在进行试验设计时,充分利用生物信息学的信息后,在进行试验设计。二、抗原决定簇的预测1、原理: 蛋白质表面部分可以使免疫系统产生抗体的区域叫抗原决定簇。一般抗原决定簇 是由612 氨基酸或碳水基团组成,它可以是由连续序列(蛋白质一级结构) 组成或由不连续的蛋白质三维结构组成。变性蛋白只是天然蛋白伸直的了产物, 用来免疫动物具有更强的抗原性。只是天然蛋白中被包在内部的抗原决定簇也会 暴露出来,如果用该变性抗原制备的抗体来检测变性抗原是可以的,如果用来

3、检 测天然蛋白,可能会有假阳性。做单抗也可以,同样道理,筛选出的单抗可能对 抗的抗原决定簇处于天然抗原的内部,是否能用还要看将来该单抗用来干什么。2、选择原则:(1) 、亲水性:大部分抗原决定簇是亲水性的。( 2)、处于结构表面:大部分抗体只与蛋白质表面部分结合。(3) 、有弹性:许多已知的抗原决定簇是在自由活动区域。所以一般来说蛋白 质的 N 端及 C 端是很好的抗原决定簇区域。3、选定抗原决定簇的步骤:(1) 预测:如软件预测DNAstar (Protean)预测,Dnaman。在线网站预测(http:/www-bimas.cit.nih.gov/molbio/hla_bind/index

4、.shtmlandhtt p:/www.im tech.res.in/raghava/propred/algori thm.h tml )(2) 选定:接近N、C 端;选取在此区间内,(Antigenic Index) Jameson-wolf 抗原决定簇选正分高处;(Hydrophilicity plot) Kyte-Doolittle预测亲水性 强的区域。同时符合以上3点的区域较好(命名为多肽片断A)。 注:如果设计的多肽是跨膜蛋白,请尽量回避选择蛋白的跨膜区,即头端信号肽 所在的区域(3) NCBI (BlastP)比对:将多肽片断A放入blastp进行同源性比对。如果制 备某一动物种属

5、的抗体,该区必须与该动物的氨基酸序列没有较高的同源性。 注:这一步往往容易漏掉,所以学会应用生物信息学,可以减少走弯路!(4) 抗原合成:原核表达:化学合成:需要做化学偶联增强多肽稳定性。多肽的纯度越纯越好,一般80% 就完全可以了。合成5-10 mg就可以了。Partll选择表达系统一、 选择表达载体1 、选择表达载体的原则(1)蛋白质大小:决定在胞质中表达还是以包涵体的形式表达,是否加标签或 以融合蛋白的形式表达。(2)蛋白需求量:根据实验方案确定蛋白需求量,选择合适的载体。(3)蛋白质是否需要保留活性:有活性的可溶性蛋白表达(胞质蛋白),无活 性的不溶的蛋白(包涵体蛋白)2、原核表达载体

6、通常为质粒,典型的表达载体应具有以下几种元件:(1)选择标志的编码序列:用于筛选重组子,有抗生素抗性基因、报告基因(GFP 等)(2)可控转录的启动子:启动子是DNA链上一段能与RNA聚合酶结合并起始RNA合成的序列,它是基因表 达不可缺少的重要调控序列。启动子的强弱是对表达量有决定影响的因素之一。 没有启动子,基因就不能转录。由于细菌RNA聚合酶不能识别真核基因的启动子, 因此原核表达载体所用的启动子必须是原核启动。原核启动子是由两段彼此分开且又高度保守的核苷酸序列组成,对mRNA的合成 极为重要。在转录起始点上游510 bp处,有一段由68个碱基组成,富含A 和T的区域,称为Pribnow

7、盒,又名TATA盒或一10区。来源不同的启动子, Pribnow盒的碱基顺序稍有变化。在距转录起始位点上游35 bp处,有一段由 10 bp组成的区域,称为-35区。转录时大肠杆菌RNA聚合酶识别并结合启动子。 -35区与RNA聚合酶s亚基结合,-10区与RNA聚合酶的核心酶结合,在转录起 始位点附近DNA被解旋形成单链,RNA聚合酶使第一和第二核苷酸形成磷酸二酯 键,以后在RNA聚合酶作用下向前推进,形成新生的RNA链。原核表达系统中通常使用的可调控的启动子有Lac(乳糖启动子)、Trp(色氨酸启 动子)、Tac(乳糖和色氨酸的杂合启动子)、lPL (l噬菌体的左向启动子)、T7 噬菌体启动

8、子等。( 3 )转录终止子:在一个基因的3¢末端或是一个操纵子的3¢末端往往有特定的核苷酸 序列,且具有终止转录功能,这一序列称之为转录终止子,简称终止子(terminator)。转录终止过程包括:RNA聚合酶停在DNA模板上不再前进,RNA 的延伸也停止在终止信号上,完成转录的RNA从RNA聚合酶上释放出来。对RNA 聚合酶起强终止作用的终止子在结构上有一些共同的特点,即有一段富含A/T 的区域和一段富含G/C的区域,G/C富含区域又具有回文对称结构。这段终止子 转录后形成的RNA具有茎环结构,并且有与A/T富含区对应的一串U。转录终止 的机制较为复杂,并且结论尚不统一。

9、但在构建表达载体时,为了稳定载体系统, 防止克隆的外源基因表达干扰载体的稳定性,一般都在多克隆位点的下游插入一 段很强的rrB核糖体RNA的转录终止子。(4)核糖体结合位点(SD序列):1974年Shine和Dalgarno首先发现,在mRNA上有核糖体的结合位点,它们是 起始密码子AUG和一段位于AUG上游310 bp处的由39 bp组成的序列。这 段序列富含嘌吟核苷酸,刚好与16S rRNA 3&cen t;末端的富含嘧啶的序列互补, 是核糖体 RNA 的识别与结合位点。以后将此序列命名为 Shine-Dalgarno 序列, 简称SD序列。它与起始密码子AUG之间的距离是影响mRNA转录

10、、翻译成蛋白的 重要因素之一,某些蛋白质与SD序列结合也会影响mRNA与核糖体的结合,从而 影响蛋白质的翻译。另外,真核基因的第二个密码子必须紧接在ATG之后,才能 产生一个完整的蛋白质。(5)多克隆位点(MCS):选择的酶切位点在靶基因上没有相应的酶切序列,否 则在构建重组子进行酶切时会把靶基因给切开。在惠赠或交换的质粒中确定 MCS 的正确性,否则会造成错读密码子。(6)复制子:通常表达载体都会选用高拷贝的复制子。 pSC101 类质粒是严谨方 式复制,拷贝数低,pCoEl, pMBI(pUC)类的复制子(复制起始部位)的拷贝数高 达500以上,是表达载体常用的。通常情况下质粒拷贝数和表达

11、量是非线性的正 相关,当然也不是越多越好,超过细胞的承受范围反而会损害细胞的生长。如果 碰巧需要2个质粒共转化,就要考虑复制元(?)是否相容的问题。(7)融合Tag:基因融合是将两个或多个开放阅读框按一定顺序连接起来,并 且正确读码。在表达靶蛋白是加上融合标签的好处,(a保护靶蛋白免受原核宿 主蛋白酶的降解;b提供亲和纯化的配基结合位点;c改善靶蛋白的溶解性,使 其正确折叠; d 与已知酶或抗原结构域连接,可以进行标记和分离; e 与信号肽 连接,可将融合蛋白分泌到特定细胞区域。) 注:选择融合蛋白表达载体时,融合标签与靶蛋白的连接处如果有酶切位点,且 想除去标签,则载体的酶切序列在靶蛋白中不

12、能出现。二、 选择表达宿主 首先要看靶基因中有没有细菌不常用的密码子如果有,需要考虑换表达菌 株。每种菌株都有自己独特的设计,或者是蛋白酶缺陷,或者是重组酶缺陷,改 造的目的都是为了让质粒在细菌中存在更稳定,表达的产物不易被降解。不同的 载体要配合一定的菌株使用,像pET系列就一定需要有T7 RNA聚合酶片段整合 在细菌中的菌株才可用于表达。采用不同调控机制会使用不同的表达菌株,所以 换菌株一定要仔细看过载体的调控方式再换。以 Novagen 为例,如果使用 BL21(DE3)表达不成功的话可以换Rosetta系列菌株,它能够由一种氯霉素抗性 的、与pET相容的质粒提供AUA,AGG,AGA,

13、CUA,CCC和GGA的tRNA。所以这 类菌株能够明显改善大肠杆菌中由于稀有密码子造成的表达限制。有时不明原因 的表达蛋白截短(比预期的分子量要小很多)也可能是由于稀有密码子造成的。 另外一种可能是不严谨的本底表达产物抑制。 1. 原核表达系统(大肠杆菌) 优点:遗传图谱明确容易培养且费用低对许多外源蛋白耐受能力强能高 水平表达这些蛋白缺点:蛋白质不能进彳丁翻译后修饰(在真核咼尔基复合体中的糖基化修饰,特 点位点的切割等产生具有活性的蛋白)具有密码子的偏好(?)2. 真核表达系统优点:可以产生修饰的蛋白缺点:真核表达系统复杂费用高 注:不同的表达宿主有相应的表达载体,二者应是最佳表达组合。P

14、artm构建重组子一、 重组子的构建1. 设计引物:a保证引物序列扩出的靶基因插入到表达载体MCS上,能够正确 读码;b引物两端加入酶切位点;c遵循引物设计原则(一般性引物自动搜索可 采用“Premier Primer 5”软件,而引物的评价分析则可采用“Oligo 6软件)。2. 扩增靶基因:(1)通过 PCR 方法:以含目的基因的克隆质粒为模板,按基因序列设计一对引 物(在上游和下游引物分别引入不同的酶切位点), PCR 循环 获得所需基因片段。( 2 )通过 RT-PCR 方法:用 TRIzol 法从细胞或组织中提取总 RNA ,以 mRNA 为模板,逆转录形成cDNA第一链,以逆转录产

15、物为模板进行PCR 循环获得产物。注:但在PCR过程中,需要减少突变的发生,可采用高保真酶,尽量减少PCR 循环次数,增加模板和引物的浓度。尤其注意不要引入终止 密码子。3. 限制性内切核酸酶消化载体 DNA 和目的基因:(1)载体双酶切后回收:将表达质粒用限制性内切酶(同引物的酶切位点)进 行双酶切,酶切产物行琼脂糖电泳后,用胶回收 Kit 或冻融法回收载体大片段。(减少假阳性的重组质粒连接,去除切下的小片段多克隆位点)(2)PCR 产物双酶切后回收:限制性消化和胶纯化是制备插入片段的常规方法。 一般先用PCR扩增带酶切位点的目标基因,克隆进T 载体,然后用与消化载体 相同的内切酶进行消化和

16、胶回收。注:双酶切后,进行回收纯化,可以提高阳性克隆的几率。4. 连接目的基因和载体二、 重组子的验证1. 将连接产物转化到相应的宿主菌(感受肽的制备,转化)2. 鉴定带有重组质粒克隆:常用方法的有a-互补、小规模制备质粒DNA进行 酶切分析、PCR以及杂交筛选。如果亚克隆成功,阳性菌落数远大于阴性菌落(甚 至全部为重组子)。3. 筛选出含重组子的转化菌落, DNA 序列测定。(正确测序) 测序结果出来后,首先,看看载体的多克隆位点和片断插入的序列,是否有因为 酶切连接而意外引入了转录终止信号,读码是否正确,这是最有说服力的鉴定结 果。有时载体几经多个实验人员的周转,反复插入片断,或者是粘端相

17、同的不同 酶切片断之间的连接,会意外在启动子后面带入终止位点,特别是用到XbaI之 类的酶要小心。然后要对测序结果进行确定,确定插入的每个碱基都是正确的,没有意外终止的 情况。注:长期保存的重组子在高浓度甘油(19)中会导致质粒不稳定,即脱质粒。 可以将载体和宿主分别保存。Part诱导表达一、 诱导表达1. 诱导表达类型组成型表达:表达载体的启动子为组成型启动子,也就是一直努力不停表达目的 蛋白的启动子,如pMAL系统。持续性表达通常表达量比较高,成本低,但是不 适合表达一些对宿主细菌生长有害的蛋白。因为过量或者有害的表达产物会影响 细菌的生长,反过来影响表达量的积累。诱导调控型表达:表达载体

18、采用诱导型启动子,只有在诱导剂存在的条件下才能 表达目的产物。这种方法有助于避免菌体生长前期高表达对菌体生长的影响,又 可减少菌体蛋白酶对目标产物的降解。特别适合解决有毒蛋白的表达。另外也有 启动子是组成型的,但是启动子所依赖的转录酶是诱导表达的,也属于诱导表达 系统。融合表达:表达载体的多克隆位点上有一段融合表达标签(Tag),表达产物为 融合蛋白(有分N端或者C端融合表达),方便后继的纯化步骤或者检测。对于 特别小的分子建议用较大的Tag (如GST)以获得稳定表达;而一般的基因多选 择小Tag以减少对目的蛋白的影响。His-Tag是最广泛采用的Tag。分泌表达:在起始密码和目的基因之间加

19、入信号肽,可以引导目的蛋白穿越细胞 膜,避免表达产物在细胞内的过度累积而影响细胞生长,或者形成包含体,而且 表达产物是可溶的活性状态不需要复性。通常这种分泌只是分泌到细胞膜和细胞 壁之间的周质空间。可溶性表达:大肠杆菌表达效率很高,特别是强启动子,目的蛋白来不及折叠而 形成不溶的包含体颗粒,包涵体容易纯化但是复性效率不高(非常股复杂)。分 泌表达可以得到可溶的产物,也有部分融合Tag有助于提高产物的可溶性,比如 Thio, pMAL 系统。2. 诱导表达(1) 挑取含重组质粒的菌体单斑至2ml LB (含Amp50“g/ml)中37C过夜培养。(2) 按1:50比例稀释过夜菌,一般将1ml菌加

20、入到含50mlLB培养基的培养瓶 中,37C震荡培养至OD6OO9O.4-1.O (最好0.6,大约需3h。(3) 取部分液体作为未诱导的对照组,余下的加入100mMIPTG至终浓度为0.4mM (T7启动子)或1 mM (T7lac启动子),作为实验组,两组继续37C震荡培养3h。(4) 分别取菌体1ml,离心12000gX30s收获沉淀,用PBS重悬、洗涤、离心。(5) 对细菌沉淀进行处理,做SDS-PAGE等分析。3. 注意事项:(1)关于表达不出来的原因有很多a如果测序都是正确的话,设计一个postive expression control,验证整个表 达系统没问题。b检测是否有毒性

21、。涂一个IPTG的板子看菌落生长情况如何。c看看稀有密码子情况,是不是存在成簇的N端的稀有密码子。d看看稳定性,上swiss prot看看在大肠杆菌中的稳定时间是多少。e如果表达的是真核蛋白,可能问题更复杂,可能涉及到伴侣蛋白等问题?f有人会检测mRNA的稳定性。g可以用亲和层析等办法富集你的目的蛋白,然后再跑胶。因为有时你的目的蛋 白表达丰度过低,SDS-PAGE检测不到。(1) 提高外源基因表达水平的基本手段之一,就是将宿主菌的生长与外源基因 的表达分成两个阶段,以减轻宿主菌的负荷。(2) IPTG: IPTG浓度0.2-0.5mM IPTG足够了,不会降低表达量,反而会增加 蛋白的可溶性

22、。IPTG浓度过高,易使蛋白表达速度增大,来不及正确折叠而产 生不溶性蛋白(包涵体)T7lac启动子是严谨启动子,IPTG诱导时可以优化最 佳浓度(25uM-1mM之间)使目的蛋白达到最佳的活性和溶解性。(3) 温度:一般37C诱导3-4小时,30C诱导6小时是蛋白表达的最大产量期。22C、18C、16C等低温诱导时间在12h-48h。低温诱导可使蛋白缓慢合成,利 于蛋白正确折叠形成可溶性蛋白。为了得到更多的可溶性蛋白,可以考虑将温度 再降(但表达总量会有所降低),可以考虑25,诱导8-10个小时;20诱导 14-18个小时;甚至1524-36小时诱导。二、检测诱导表达1. 细菌的裂解裂常用方

23、法有:高温珠磨法;高压匀浆;超声破碎法;酶溶法;化学渗 透等。前三种方法属机械破碎法,并且方法、已在工业生产中得到应用,后 三种方法在实验室研究中应用较为广泛。下面介绍酶溶法和超声破碎法结合使用的实验步骤。(1) 常用的溶解酶有溶菌酶;p -1,3 -葡聚糖酶;P -1,6 -葡聚糖酶;蛋白酶; 壳多糖酶;糖昔酶等。溶菌酶主要对细菌类有作用,而其他几种酶对酵母作用显 著。4 C, 5000rpm离心,15 min,收集诱导表达的细菌培养液(30 mL )。 弃上清,1mL裂解缓冲液,悬浮沉淀,30C作用1h。(2) 超声破碎细菌,40w,10s,10s,50 次;12000rpm ,4 C离心

24、,15min,分别 收集上清液和沉淀。分别取少量上清和沉淀,加入等体积的2X凝胶电泳加样 缓冲液,待检测。注意事项:超声破碎与声频、声能、处理时间、细胞浓度、菌种类型等因素有关, 应根据具体情况掌握;超声波破菌前,标本经3 -4 次冻溶后更容易破碎。2进行SDS -PAGE检测(1) 表达结果:a细胞质中表达;b包涵体形式表达。(2) 包涵体的纯化a包涵体的洗涤;b包涵体的溶解;c包涵体的检测从基因角度改造一下,如果能够去掉一些疏水区段会很大程度上改善蛋白的可溶 性(4) 注意事项a所有操作尽量在冰上操作,以避免蛋白质发生变性;b根据自己的需要选择不同的表达载体,并注意不同的表达载体上的融合标

25、签和携带的抗性基因,其中有些标签是可以去除的。具体的序列和说明都可以从中下载。c包涵体蛋白溶液保存在四度里,避免反复冻融,否则体系不稳定,蛋白以沉淀 析出;胞质蛋白不能在四度放置很久,因为上清中含有很多蛋白酶,会把靶蛋白 降解掉。PartW诱导表达一、诱导表达1. 诱导表达类型组成型表达:表达载体的启动子为组成型启动子,也就是一直努力不停表达目的 蛋白的启动子,如pMAL系统。持续性表达通常表达量比较高,成本低,但是不 适合表达一些对宿主细菌生长有害的蛋白。因为过量或者有害的表达产物会影响 细菌的生长,反过来影响表达量的积累。诱导调控型表达:表达载体采用诱导型启动子,只有在诱导剂存在的条件下才

26、能 表达目的产物。这种方法有助于避免菌体生长前期高表达对菌体生长的影响,又 可减少菌体蛋白酶对目标产物的降解。特别适合解决有毒蛋白的表达。另外也有 启动子是组成型的,但是启动子所依赖的转录酶是诱导表达的,也属于诱导表达 系统。融合表达:表达载体的多克隆位点上有一段融合表达标签(Tag),表达产物为 融合蛋白(有分N端或者C端融合表达),方便后继的纯化步骤或者检测。对于 特别小的分子建议用较大的Tag (如GST)以获得稳定表达;而一般的基因多选 择小Tag以减少对目的蛋白的影响。His-Tag是最广泛采用的Tag。分泌表达:在起始密码和目的基因之间加入信号肽,可以引导目的蛋白穿越细胞 膜,避免

27、表达产物在细胞内的过度累积而影响细胞生长,或者形成包含体,而且 表达产物是可溶的活性状态不需要复性。通常这种分泌只是分泌到细胞膜和细胞 壁之间的周质空间。可溶性表达:大肠杆菌表达效率很高,特别是强启动子,目的蛋白来不及折叠而 形成不溶的包含体颗粒,包涵体容易纯化但是复性效率不高(非常股复杂)。分 泌表达可以得到可溶的产物,也有部分融合Tag有助于提高产物的可溶性,比如 Thio, pMAL 系统。2. 诱导表达(1) 挑取含重组质粒的菌体单斑至2ml LB (含Amp50“g/ml)中37C过夜培养。(2) 按1:50比例稀释过夜菌,一般将1ml菌加入到含50mlLB培养基的培养瓶 中,37C

28、震荡培养至OD6OO9O.4-1.O (最好0.6,大约需3h。(3) 取部分液体作为未诱导的对照组,余下的加入100mMIPTG至终浓度为0.4mM(T7启动子)或1 mM (T7lac启动子),作为实验组,两组继续37C震荡培养3h。(4) 分别取菌体1ml,离心12000gX30s收获沉淀,用PBS重悬、洗涤、离心。(5) 对细菌沉淀进行处理,做SDS-PAGE等分析。3. 注意事项:(1)关于表达不出来的原因有很多a如果测序都是正确的话,设计一个postive expression control,验证整个表 达系统没问题。b检测是否有毒性。涂一个IPTG的板子看菌落生长情况如何。c看

29、看稀有密码子情况,是不是存在成簇的N端的稀有密码子。d看看稳定性,上swiss prot看看在大肠杆菌中的稳定时间是多少。e如果表达的是真核蛋白,可能问题更复杂,可能涉及到伴侣蛋白等问题?f有人会检测mRNA的稳定性。g可以用亲和层析等办法富集你的目的蛋白,然后再跑胶。因为有时你的目的蛋 白表达丰度过低,SDS-PAGE检测不到。(1) 提高外源基因表达水平的基本手段之一,就是将宿主菌的生长与外源基因 的表达分成两个阶段,以减轻宿主菌的负荷。(2) IPTG: IPTG浓度0.2-0.5mM IPTG足够了,不会降低表达量,反而会增加 蛋白的可溶性。IPTG浓度过高,易使蛋白表达速度增大,来不

30、及正确折叠而产 生不溶性蛋白(包涵体)T7lac启动子是严谨启动子,IPTG诱导时可以优化最 佳浓度(25uM-1mM之间)使目的蛋白达到最佳的活性和溶解性。(3) 温度:一般37C诱导3-4小时,30C诱导6小时是蛋白表达的最大产量期。 22C、18C、16C等低温诱导时间在12h-48h。低温诱导可使蛋白缓慢合成,利 于蛋白正确折叠形成可溶性蛋白。为了得到更多的可溶性蛋白,可以考虑将温度 再降(但表达总量会有所降低) ,可以考虑25,诱导8-10个小时; 20诱导 14-18个小时;甚至1524-36小时诱导。二、检测诱导表达1.细菌的裂解裂常用方法有:高温珠磨法;高压匀浆;超声破碎法;酶

31、溶法;化学渗 透等。前三种方法属机械破碎法,并且方法、已在工业生产中得到应用,后 三种方法在实验室研究中应用较为广泛。下面介绍酶溶法和超声破碎法结合使用的实验步骤。(1) 常用的溶解酶有溶菌酶;p -1,3 -葡聚糖酶;P -1,6 -葡聚糖酶;蛋白酶; 壳多糖酶;糖昔酶等。溶菌酶主要对细菌类有作用,而其他几种酶对酵母作用显 著。4 C, 5000rpm离心,15 min,收集诱导表达的细菌培养液(30 mL )。 弃上清,1mL裂解缓冲液,悬浮沉淀,30C作用1h。(2) 超声破碎细菌,40w,10s,10s,50 次;12000rpm ,4 C离心,15min,分别 收集上清液和沉淀。分别

32、取少量上清和沉淀,加入等体积的2X凝胶电泳加样 缓冲液,待检测。注意事项:超声破碎与声频、声能、处理时间、细胞浓度、菌种类型等因素有关,应根据具体情况掌握;超声波破菌前,标本经3 -4 次冻溶后更容易破碎。2进行SDS -PAGE检测(1) 表达结果:a细胞质中表达;b包涵体形式表达。(2) 包涵体的纯化a包涵体的洗涤;b包涵体的溶解;c包涵体的检测从基因角度改造一下,如果能够去掉一些疏水区段会很大程度上改善蛋白的可溶 性(4) 注意事项a所有操作尽量在冰上操作,以避免蛋白质发生变性;b根据自己的需要选择不同的表达载体,并注意不同的表达载体上的融合标签和携带的抗性基因,其中有些标签是可以去除的

33、。具体的序列和说明都可以从中下载。c包涵体蛋白溶液保存在四度里,避免反复冻融,否则体系不稳定,蛋白以沉淀 析出;胞质蛋白不能在四度放置很久,因为上清中含有很多蛋白酶,会把靶蛋白 降解掉。PartN诱导表达一、诱导表达1. 诱导表达类型组成型表达:表达载体的启动子为组成型启动子,也就是一直努力不停表达目的 蛋白的启动子,如pMAL系统。持续性表达通常表达量比较高,成本低,但是不 适合表达一些对宿主细菌生长有害的蛋白。因为过量或者有害的表达产物会影响 细菌的生长,反过来影响表达量的积累。诱导调控型表达:表达载体采用诱导型启动子,只有在诱导剂存在的条件下才能 表达目的产物。这种方法有助于避免菌体生长

34、前期高表达对菌体生长的影响,又 可减少菌体蛋白酶对目标产物的降解。特别适合解决有毒蛋白的表达。另外也有 启动子是组成型的,但是启动子所依赖的转录酶是诱导表达的,也属于诱导表达 系统。融合表达:表达载体的多克隆位点上有一段融合表达标签(Tag),表达产物为 融合蛋白(有分N端或者C端融合表达),方便后继的纯化步骤或者检测。对于 特别小的分子建议用较大的Tag (如GST)以获得稳定表达;而一般的基因多选 择小Tag以减少对目的蛋白的影响。His-Tag是最广泛采用的Tag。分泌表达:在起始密码和目的基因之间加入信号肽,可以引导目的蛋白穿越细胞 膜,避免表达产物在细胞内的过度累积而影响细胞生长,或

35、者形成包含体,而且 表达产物是可溶的活性状态不需要复性。通常这种分泌只是分泌到细胞膜和细胞 壁之间的周质空间。可溶性表达:大肠杆菌表达效率很高,特别是强启动子,目的蛋白来不及折叠而 形成不溶的包含体颗粒,包涵体容易纯化但是复性效率不高(非常股复杂)。分 泌表达可以得到可溶的产物,也有部分融合Tag有助于提高产物的可溶性,比如 Thio, pMAL 系统。2. 诱导表达(1) 挑取含重组质粒的菌体单斑至2ml LB (含Amp50“g/ml)中37C过夜培养。(2) 按1:50比例稀释过夜菌,一般将1ml菌加入到含50mlLB培养基的培养瓶 中,37C震荡培养至OD6OO9O.4-1.O (最好

36、0.6,大约需3h。(3) 取部分液体作为未诱导的对照组,余下的加入100mMIPTG至终浓度为0.4mM(T7启动子)或1 mM (T7lac启动子),作为实验组,两组继续37C震荡培养3h。(4) 分别取菌体1ml,离心12000gX30s收获沉淀,用PBS重悬、洗涤、离心。(5) 对细菌沉淀进行处理,做SDS-PAGE等分析。3. 注意事项:(1)关于表达不出来的原因有很多a如果测序都是正确的话,设计一个postive expression control,验证整个表 达系统没问题。b检测是否有毒性。涂一个IPTG的板子看菌落生长情况如何。c看看稀有密码子情况,是不是存在成簇的N端的稀有

37、密码子。d看看稳定性,上swiss prot看看在大肠杆菌中的稳定时间是多少。e如果表达的是真核蛋白,可能问题更复杂,可能涉及到伴侣蛋白等问题?f有人会检测mRNA的稳定性。g可以用亲和层析等办法富集你的目的蛋白,然后再跑胶。因为有时你的目的蛋 白表达丰度过低,SDS-PAGE检测不到。(1) 提高外源基因表达水平的基本手段之一,就是将宿主菌的生长与外源基因 的表达分成两个阶段,以减轻宿主菌的负荷。(2) IPTG: IPTG浓度0.2-0.5mM IPTG足够了,不会降低表达量,反而会增加 蛋白的可溶性。IPTG浓度过高,易使蛋白表达速度增大,来不及正确折叠而产 生不溶性蛋白(包涵体)T7l

38、ac启动子是严谨启动子,IPTG诱导时可以优化最 佳浓度(25uM-1mM之间)使目的蛋白达到最佳的活性和溶解性。(3) 温度:一般37C诱导3-4小时,30C诱导6小时是蛋白表达的最大产量期。 22C、18C、16C等低温诱导时间在12h-48h。低温诱导可使蛋白缓慢合成,利 于蛋白正确折叠形成可溶性蛋白。为了得到更多的可溶性蛋白,可以考虑将温度 再降(但表达总量会有所降低) ,可以考虑25,诱导8-10个小时; 20诱导 14-18个小时;甚至1524-36小时诱导。二、检测诱导表达1.细菌的裂解裂常用方法有:高温珠磨法;高压匀浆;超声破碎法;酶溶法;化学渗 透等。前三种方法属机械破碎法,

39、并且方法、已在工业生产中得到应用,后 三种方法在实验室研究中应用较为广泛。下面介绍酶溶法和超声破碎法结合使用的实验步骤。(1) 常用的溶解酶有溶菌酶;p -1,3 -葡聚糖酶;P -1,6 -葡聚糖酶;蛋白酶; 壳多糖酶;糖昔酶等。溶菌酶主要对细菌类有作用,而其他几种酶对酵母作用显 著。4 C, 5000rpm离心,15 min,收集诱导表达的细菌培养液(30 mL )。 弃上清,1mL裂解缓冲液,悬浮沉淀,30C作用1h。(2) 超声破碎细菌,40w,10s,10s,50 次;12000rpm ,4 C离心,15min,分别 收集上清液和沉淀。分别取少量上清和沉淀,加入等体积的2X凝胶电泳加

40、样 缓冲液,待检测。注意事项:超声破碎与声频、声能、处理时间、细胞浓度、菌种类型等因素有关, 应根据具体情况掌握;超声波破菌前,标本经3 -4次冻溶后更容易破碎。2进行SDS -PAGE检测(1) 表达结果:a细胞质中表达;b包涵体形式表达。(2) 包涵体的纯化a包涵体的洗涤;b包涵体的溶解;c包涵体的检测 从基因角度改造一下,如果能够去掉一些疏水区段会很大程度上改善蛋白的可溶 性(4) 注意事项a所有操作尽量在冰上操作,以避免蛋白质发生变性;b根据自己的需要选择不同的表达载体,并注意不同的表达载体上的融合标签和携带的抗性基因,其中有些标签是可以去除的。具体的序列和说明都可以从中下载。c包涵体蛋白溶液保存在四度里,避免反复冻融,否则体系不稳定,蛋白以沉淀 析出;胞质蛋白不能在四度放置很久,因为上清中含有很多蛋白酶,会把靶蛋白 降解掉。

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