环境因子对微藻胞外多聚物主要组分的影响

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1、环境因子对微藻胞外多聚物主要组分的影响吴琪璐;崔文倩;沈亮;卢英华【摘要】胞外多聚物(extracellularpolymericsubstances,EPS)对于微藻细胞的生长和用途具有重要的影响.以1株葡萄藻、1株栅藻和2株小球藻为争辩对象,考察氮源含量转变时微藻EPS中主要组分多糖和蛋白质的变化状况选取长势最优的葡萄藻，争辩pH值、温度和培育方式对EPS组分的影响.结果表明:缺氮的生长环境会引起EPS中蛋白质含量的削减，最多可削减56.0%;微藻EPS中最多的是胞外多糖占总EPS组分的58.08%80.78%,而胞外蛋白质含量则占5.73%13.45%;相比葡萄藻和栅藻，小球藻胞外存在更

2、多的多糖和蛋白质对于葡萄藻,pH值为11时EPS中多糖和蛋白质含量(按每克细胞计)与pH值为7时相比分别增加0.135和0.018g;降低温度使EPS多糖含量从0.014g急剧增加到0.600g;异养培育时EPS中多糖含量更高而自养培育时蛋白质含量更高.Extracellularpolymericsubstances(EPS)haveanimportanteffectoncellgrowth,flocculation,biofilmformation,etc.Inthispaper,onestrainofBotryococcus,onestrainofScenedesmus,andtwostr

3、ainsofChlorellawereselectedtoinvestigatethepoly-saccharideandproteininEPSwhenthenitrogencontent,pH,temperatureandtheculturemodechanged.Theresultsshowedthatthenitrogen-deficientgrowthenvironmentcausedareductionofupto56.0%inprotein.Polysaccharidesaccountedfor58.08%to80.78%ofEPS,whileproteinsaccountedf

4、or5.73%to13.45%.ThereweremorepolysaccharidesandproteinsinChlorellastrainsthaninotherspecies.AselaboratedintherepresentativeBotryococcusstrain,whenthepHvaluewas11,thepolysaccharideandpro-teincontents(pergramofcellweight)inEPSapproximatelyincreasedby0.135gand0.018g,respectively,comparedwiththedataatpH

5、7.Thecontentofpolysaccharidealsoincreasedfrom0.014gto0.600gasthetemperaturedecreased.Whentheculturemodechanged,thepolysaccharidecontentinEPSoftheheterotrophiccultivationwashigherthanthatoftheautotrophiccultivation,whiletheproteincontentshowedtheoppositetrend.期刊名称】厦门高校学报(自然科学版)年(卷),期】2022(057)003【总页数

6、】8页(P346-353)【关键词】微藻;胞外多聚物;多糖;蛋白质【作者】吴琪璐;崔文倩;沈亮;卢英华【作者单位】厦门高校化学化工学院,福建厦门361005;厦门高校化学化工学院,福建厦门361005;厦门高校化学化工学院,福建厦门361005;厦门高校化学化工学院,福建厦门361005【正文语种】中文【中图分类】Q89接受微藻处理污水的生态修复技术已经成为世界上有关环境治理和能源进展方面最热门的争辩方向之一，然而,接受污水培育微藻往往面临环境条件波动大以及养分元素不均衡等问题为了得到更好的污水处理效果,需要进一步争辩微藻的生长特性，包括其胞外多聚物(extracellularpolymeri

7、csubstances,EPS)的组分一般而言EPS是由微生物分泌到胞外的简洁混合产物注要包括多糖、蛋白质、脂质、核酸和其他一些高分子聚合物1-2.依据存在状态,EPS又可分可溶性EPS(solubleEPS,S-EPS)和结合性EPS(boundEPS,B-EPS)3-4.S-EPS主要存在于培育基质中或者轻轻附着在细胞表面,B-EPS则紧密结合在细胞表面.EPS在细胞的生长、聚集和生物膜形成等方面发挥很重要的作用.EPS的存在会影响微藻的絮凝，这在微藻污水处理后收集藻细胞中起关键作用.目前对于EPS组分的争辩主要针对胞外多糖和蛋白质:多糖是EPS中含量最高的组分,除个别藻细胞分泌的胞外多糖

8、为均聚物外,大多数为带有不同取代基的杂多糖5;蛋白质是EPS的另一个重要组分，目前发觉绿藻的EPS中多为糖蛋白6.不同生长时期和条件下，微藻的蛋白质在EPS中所占比例不同，富氮培育条件下蛋白质所占比例更高7.EPS的产生受到许多外界因素的影响首先，培育基质的不同会对EPS产量产生影响,争辩发觉活性污泥中醋酸盐作为碳源比葡萄糖作为碳源产生的EPS更多8.其次,微生物的兼养、自养和异养间的变化对EPS也会产生影响，从兼养变为异养会给微生物带来环境压力，从而产生更多EPS9.再者，不同的养分元素含量也会产生影响,如:在污水中生长的微藻受氮、磷等养分元素含量的影响,当氮和磷含量都低于标准液体培育基中的

9、含量时，藻细胞会产生大量EPS10；活性污泥产生的EPS则随着环境中碳氮比的降低,其蛋白质和多糖的比例提升11.此外,还有一些其他外界条件影响微藻EPS的分泌，其中常见的是一些有毒成分,如重金属元素的存在会加剧EPS的分泌12.本争辩中选择4种常见的淡水微藻,分别考察氮源含量、pH值、温度和培育方式对EPS组分和含量的影响,以期获得微藻对于环境的适应性生长条件，为微藻污水处理应用和藻细胞收集供应理论依据.1材料与方法试验材料试验中使用的4种微藻分别为葡萄藻(Botryococcussp.NJD-1)、栅藻(Scenedesmussp.NJD-5)、小球藻A(Chlorellasp.NJD-3)

10、以及小球藻B(Chlorellasp.NJD-10),由本课题组从本地一家污水处理厂污水环境中分别得到，均属于绿藻绿藻的培育组分含量按每克细胞中的质量计，不同图14种微藻EPS中多糖和蛋白质(b)含量的对比Fig.1Contentsofpolysaccharideandprotein(b)inEPSoffourdifferentmicroalgae接受BG11液体培育基进行无菌分批培育，培育过程包括预培育和培育两个阶段在异养条件下，预培育阶段持续4d,首先在250mL锥形瓶中加入100mL灭菌液体培育基(含10g/L葡萄糖),pH值调至7(用1mol/LHCl溶液和1mol/LNaOH溶液调整

11、，下同),再加入10mL藻液，置于30C、150r/min的恒温摇床中培养培育阶段持续12d,首先在250mL锥形瓶中加入150mL灭菌液体培育基(含10g/L葡萄糖)，将pH值调至7,再加入确定量预培育的藻液，其他条件与预培育阶段全都.在自养条件下，预培育阶段持续4d,首先配制500mL灭菌液体培育基,pH值调至7,再向其中加入10mL藻液,24h光照(飞利浦TWG121/2005型支架灯管4根，功率21W),恒温30C,经过灭菌过滤膜通入CO2(纯度99.9%),气体流量保持在100mL/min培育阶段持续12d,首先配制1L灭菌液体培育基，将pH值调至7,再向其中加入确定量预培育的藻液，

12、其他条件与预培育阶段全都.上述条件即为标准培育条件分析环境因子对微藻EPS的影响，仅转变单一环境条件,其他条件均不变，其中缺氮培育条件指将培育基中氮的含量削减50%EPS的提取微藻EPS的分别提取选用超声降解法13:首先在不同培育时间的摇瓶中取4mL微藻样品，在9000r/min转速下离心15min,上清液即为S-EPS；沉淀重新用磷酸盐缓冲液(10mmol/LNaCI,1.2mmol/LKH2PO4,6mmol/LNa2HPO4)溶解，将样品放入冰水中，在40%最大功率的条件下进行超声处理2min;然后在9000r/min转速下离心15min,上清液即B-EPS接受丙酮提取的方法测定总的EP

13、S干质量:取确定量培育过程中的微藻样品，用WhatmanNo.1滤膜进行过滤，保留清液,1000r/min转速下离心10min;取上清液，加入等体积的丙酮，在4C条件下保存48h;之后10000r/min转速下离心10min,保留沉淀，冻干24h即得EPS并称量其干质量14.藻细胞生长指标测定与组分分析取4mL微藻样品于离心管,10000r/min转速下离心10min后倒去上清液，保留沉淀，放入60C烘箱烘干24h后进行称量,该质量减去空管质量即为藻细胞干质量;同时接受双光束紫外-可见分光光度计在波长680nm条件下检测同一微藻样品的光密度(OD),绘制OD值与藻细胞干质量的标准曲线.蛋白质测

14、定接受考马斯亮蓝法15,使用Bradford染色剂多糖测定接受苯酚-硫酸法16全部试验重复3次,结果取平均值.2结果与争辩2.1缺氮对不同微藻EPS的影响标准条件下微藻EPS组分比较在异养标准培育状态下测定4种微藻的EPS组分含量，结果如图1所示:小球藻B的EPS中多糖含量明显大于其他3种微藻，经过最初微藻快速生长的变化阶段，从第8天开头稳定在约0.56g;小球藻A的多糖含量次之，从第4天开头稳定在约0.21g;葡萄藻和栅藻中多糖含量均较低(图1(a)小球藻B的EPS中蛋白质含量最高，最大值达到0.12g;小球藻A的蛋白质含量则基本稳定在0.03g左右，即50mg/L(上清液)，与前人争辩结果

15、8相像;而栅藻的蛋白含量最低，最大值仅0.0014g(图1(b)综上,2种小球藻分泌的EPS中多糖与蛋白质的含量高于葡萄藻和栅藻.图2葡萄藻的EPS中多糖和蛋白质(b)含量的变化Fig.2Changesofpolysaccharide(a)andprotein(b)contentsinEPSofBotryococcussp.NJD-1对4种微藻在标准生长条件下的生物量状况进行分析,结果显示葡萄藻最快(第4天)达到生物量最大值14.97g/L,此外3种微藻在第6天后才达到生物量最大值(栅藻16.67g/L，小球藻A1.64g/L，小球藻B0.95g/L)虽然葡萄藻长势最好，但是以单位生物量来衡量

16、EPS组分含量时发觉其EPS中多糖含量最低.已有争辩发觉微生物细胞在底物限制时可接受EPS中的物质作为碳源和能量来源17,由于葡萄藻生长速率较快，栅藻生物量较高,相同培育条件下葡萄藻和栅藻更简洁受底物限制，所以可能会吸取更多的EPS多糖作为自身能量来源.缺氮条件下4种微藻EPS组分比较氮作为微藻生长过程中重要的养分元素,起着至关重要的作用有机氮存在于许多生物基质中，如肽、蛋白质、酶、叶绿素、能量转移分子(ADP和ATP)和基因材料(RNA和DNA).有机氮的无机来源包括硝酸根(NO3-)、亚硝酸根(NO2-)、硝酸(HN03)、铵根(NH4+)、氨(NH3)和氮气(N2)微藻在无机氮通过同化作

17、用转化为有机氮的过程中起着准备性作用.对葡萄藻、栅藻、小球藻A和小球藻B分别进行标准培育和缺氮培育条件下的实验,结果显示2种培育条件下的多糖含量均远大于蛋白质含量,但是在不同微藻的生长过程中两者变化趋势有所差异(图2)葡萄藻EPS中多糖含量的变化如图2(a)所示.总体来看基本均呈下降趋势，且前6天的下降速率极快生长初期在S-EPS和B-EPS中，缺氮培育条件下的多糖含量均高于标准培育条件下,其中第4天和第6天的S-EPS中多糖含量均高出标准培育条件下50%以上;但生长至第10天后,葡萄藻生长状态趋于稳定,2种培育条件下多糖的含量基本相同,随之趋于稳定,S-EPS中的多糖含量均维持在0.014g

18、左右;在同培育条件下,B-EPS中的多糖含量远低于S-EPS中倒稳定期时B-EPS中的多糖含量仅有0.001g葡萄藻EPS中蛋白质含量的变化如图2(b)所示总体来看S-EPS中的蛋白质含量均大于B-EPS中标准培育条件下葡萄藻的S-EPS中蛋白质含量不断增加，前6天虽低于缺氮培育条件下,但在生长稳定期超过缺氮培育条件下,在第12天达到0.0021g这可能是由于缺氮培育的葡萄藻在生长初期会由于缺氮带来的环境压力促使细胞分泌更多蛋白质,但到了后期,环境中缺少氮源,葡萄藻开头吸取之前释放的蛋白质来满足生长的养分需求;然而在标准培育条件下,葡萄藻生长快速,其细胞数量更多,在分批培育初始底物浓度相同状况

19、下死亡的细胞也更多,细胞死亡裂开释放出蛋白质导致其含量不断增加.综上,葡萄藻EPS中多糖含量慢慢削减，而蛋白质含量略微增多,这可能是由于葡萄藻在慢慢分泌EPS的同时也会吸取EPS中的组分，其对EPS中多糖的吸取量大于分泌量而对蛋白质的吸取量小于分泌量，所以消逝上述变化趋势.图3栅藻的EPS中多糖和蛋白质(b)含量的变化Fig.3Changesofpolysaccharide(a)andprotein(b)contentsinEPSofScenedesmussp.NJD-5栅藻EPS中多糖含量的变化与葡萄藻类似如图3(a)所示，总体上多糖含量在生长初期急速下降,缺氮培育条件下的多糖含量均高于标准

20、培育条件下；但到了生长稳定期(第10天后)相差不大，标准培育和缺氮培育条件下的S-EPS中多糖含量分别稳定在0.025和0.030g这可能是由于栅藻生长后期大量的细胞年轻并死亡，从而造成细胞裂开，释放出了确定量的多糖此外,S-EPS中的多糖含量始终高于B-EPS中由于栅藻EPS中蛋白质含量相对较低，测定误差较大,所以仅选取培育初期(第2天)和末期(第12天)进行对比由图3(b)可知,2种培育条件下，其S-EPS中的蛋白质含量均有所增加,但B-EPS中的蛋白质含量在标准条件下变化不大,甚至略有削减,而在缺氮条件下则有所增加.图4小球藻A的EPS中多糖和蛋白质(b)含量的变化Fig.4Change

21、sofpolysaccharide(a)andprotein(b)contentsinEPSofChlorellasp.NJD-3小球藻A的EPS中多糖含量的变化如图4(a)所示，在标准培育条件下S-EPS中多糖含量明显高于缺氮培育条件下，而B-EPS中除培育初期外则基本相同，这与葡萄藻和栅藻的结果不同，但整体变化趋势基本全都小球藻A的EPS中蛋白质含量的变化与葡萄藻和栅藻有所差别，如图4(b)所示，除标准培育条件下S-EPS中蛋白质含量变化不大外，其余均呈削减趋势这可能是由于小球藻A在缺氮培育条件下生物量更大,且生长速率更快,需要更多的氮源,此时蛋白质可作为有效的氮源被细胞吸取接受,所以蛋白

22、质含量慢慢削减此外，与葡萄藻类似,小球藻A的S-EPS中的蛋白质含量始终高于B-EPS中，标准培育条件下S-EPS中的蛋白质含量最高可达到0.030g.如图5(a)所示,小球藻B的S-EPS中多糖含量在2种培育条件下，生长至第8天后均稳定在0.45g左右；B-EPS中则稳定在相对较低的水平，标准培育条件下最终维持在0.11g,而缺氮培育条件下仅为0.041g,这可能与其生长稳定期的细胞数量较少有确定关系从图5(b)中可见,小球藻B生长至稳定期后,S-EPS中的蛋白质含量明显高于B-EPS中,这与多糖含量的结果全都;并且在缺氮培育条件下，由于细胞对EPS中蛋白质的吸取接受，蛋白质含量整体呈下降趋

23、势.不同微藻EPS中多糖和蛋白质含量比较图5小球藻B的EPS中多糖和蛋白质(b)含量的变化Fig.5Changesofpolysaccharide(a)andprotein(b)contentsinEPSofChlorellasp.NJD-10由于栅藻的EPS中多糖含量变化与葡萄藻类似且蛋白质含量极少，表1仅列出了葡萄藻、小球藻A和小球藻B在标准和缺氮2种培育条件下EPS的总量及其中多糖和蛋白质的质量分数由表1可知，微藻在缺氮培育条件下EPS中多糖和蛋白质的质量分数相对于标准培育条件下有所降低,其中多糖质量分数降低最多的为葡萄藻,下降了22.7%,而蛋白质质量分数降低最多的为小球藻A,下降了5

24、6.0%，这说明缺氮培育会导致EPS的组成发生变化葡萄藻和小球藻B的EPS总量在缺氮培育条件下均有所削减，而小球藻A在缺氮培育条件下相对于标准培育条件下增加了约29.3%,这可能与小球藻A在缺氮培育条件下生长更好有关，符合已有文献报道的培养条件转变会导致微生物EPS组分比例发生转变，且变化趋势和微生物种类、生长状况和转变的培育条件等有关18-20.表13种微藻的EPS总量及多糖和蛋白质组分的质量分数Tab.1TotalamountsofEPSandproportionsofpolysaccharideandproteininEPSofthreedifferentmicroalgae微藻种类培育

25、条件p(EPS)/L-1)3(多糖)/%3(蛋白质)/%葡萄藻标准缺氮小球藻A标准0.39280.7813.01缺氮0.50779.365.73小球藻B标准0.65474.6213.45缺氮0.53469.849.65综合以上结果及微藻自身的生长状况,鉴于葡萄藻有确定代表性,且能在不适宜生长的条件中保持稳定生长，后续试验选择葡萄藻争辩pH值、温度和培育方式对EPS组分的影响.2.2pH值对葡萄藻EPS组分的影响2.2.1多糖含量培育阶段分别在pH值为5,7,9和11条件下进行葡萄藻的培育及EPS组分的分析，所得EPS中多糖含量的变化结果如图6所示由图6(a)可知：当pH值为11时,S-EPS中

26、的多糖含量始终大于同时期其他pH条件下，到第12天时仍能达到0.15g；而pH值为7时，生长稳定后S-EPS中的多糖含量最低.B-EPS中的多糖含量如图6(b)所示，总体上远小于S-EPS中,pH值为11时的最大值也仅有0.021g；与S-EPS中的结果类似,pH值为11时的B-EPS中多糖含量始终高于同时期其他pH条件下，且pH值为7时，生长稳定后B-EPS中的多糖含量最低.2.2.2蛋白质含量pH值对EPS中蛋白质含量的影响如图7所示由图7(a)可知：S-EPS中的蛋白质含量随着葡萄藻的生长整体呈增大趋势，在生长稳定后，pH值为5时的蛋白质含量明显大于其他pH条件下，最高达到0.0045g

27、；在pH值为9时,生长稳定后的蛋白质含量最低由于葡萄藻B-EPS中蛋白质含量相对较低,测定结果存在较大误差,所以选取培育初期(第2天)和培育末期(第12天)进行蛋白质含量的测定并对比,结果如图7(b)所示:生长初期,pH值为11时的蛋白质含量最高，达0.0026g,而pH值为7时最低;但随着葡萄藻的生长，到了生长末期,pH值为11时的蛋白质含量明显降低，仅有0.0004g,而pH值为7时的蛋白质含量则明显提升，达0.0009g图6葡萄藻在不同条件下S-EPS(a)和B-EPS(b)中多糖含量的变化Fig.6ChangesofpolysaccharidecontentsinS-EPS(a)and

28、B-EPS(b)ofBotryococcussp.NJD-1underdifferentpHvalues图7葡萄藻在不同pH条件下S-EPS(a)和B-EPS(b)中蛋白质含量的变化Fig.7ChangesofproteincontentsinS-EPS(a)andB-EPS(b)ofBotryococcussp.NJD-1underdifferentpHvalues图8葡萄藻在不同温度条件下EPS中多糖和蛋白质(b)含量的变化Fig.8Changesofpolysaccharide(a)andprotein(b)contentsintheEPSofBotryococcussp.NJD-1at

29、differenttemperature2.3温度对葡萄藻EPS组分的影响葡萄藻在不同温度条件下EPS中多糖含量的变化如图8(a)所示：总体来看,多糖含量随着葡萄藻的生长呈降低趋势,温度为25C时葡萄藻倾向于分泌更多的多糖,S-EPS和B-EPS中的多糖含量均高于30C时这一结果也印证了EPS的分泌是微藻对恶劣环境的一种响应机制:在30C时，葡萄藻处于适宜的生长环境中,EPS的分泌削减;而当温度降低到25C时，温度条件偏离了葡萄藻适应范围，葡萄藻减缓生长进而分泌出更多的多糖不同温度条件下,EPS中蛋白质含量的变化如图8(b)所示:当温度为25C时,S-EPS中的蛋白质含量随着葡萄藻的生长快速增

30、加,B-EPS中则在初期快速增加后趋于稳定；与25C相比,30C时S-EPS和B-EPS中的蛋白质含量均维持在极低的水平,与多糖的结果全都.2.4自养和异养对葡萄藻EPS组分的影响图9葡萄藻在异养和自养条件下EPS的多糖和蛋白质(b)含量的变化Fig.9Changesofpolysaccharide(a)andprotein(b)contentsinEPSofBotryococcussp.NJD-1underautotrophicandheterotrophicconditions将葡萄藻在自养和异养2种培育条件下的EPS组分进行对比分析，结果如图9所示从图9(a)可以明显看出：葡萄藻在自养培

31、育条件下多糖含量在初期下降后趋于稳定，且生长稳定后S-EPS中的多糖含量(约0.0063g)远低于异养条件下(约0.0140g);B-EPS中多糖含量随着葡萄藻生长慢慢下降，至生长稳定后，自养条件下的多糖含量略高于异养条件下蛋白质含量的变化如图9(b)所示：异养培育条件下的葡萄藻EPS中蛋白质含量整体呈提升趋势，而自养培育条件下的葡萄藻则在初期分泌出大量蛋白质后,随着细胞增长蛋白质含量降低,在生长到达稳定期后又有所提升此外，在相同培育条件下多糖的总含量始终大于蛋白质的总含量，印证了之前相关争辩13所得的结论.3结论微藻在适宜的培育基中生长时,EPS中多糖的含量会随着细胞增多而下降，蛋白质含量则

32、呈现相反趋势对比本争辩中的4种微藻，小球藻释放更多的多糖和蛋白质.氮作为微藻生长的必要元素，其削减不愿定会抑制微藻的生长，但会迫使微藻细胞从其他来源吸取养分，因此缺氮培育条件会造成EPS中的蛋白质含量削减环境呈碱性（pH值为11）会刺激葡萄藻产生更多EPS多糖和蛋白质，含量与中性（pH值为7）时相比分别增加0.135和0.018g温度的降低（从30至25C）可使葡萄藻EPS中多糖和蛋白质的含量急剧增加，最高达约40倍.自养和异养的培育类型转变对葡萄藻EPS中多糖和蛋白质含量的影响不同，自养会导致EPS中消逝大量蛋白质,而异养则会产生更多的多糖，这与其对于碳源接受方式的不同有关综上，本争辩初步研

33、讨了各种外界环境条件对微藻EPS多糖和蛋白质的影响规律，对于了解微藻处理污水时的生长状况和取得更好的集藻效果有确定指导意义.1 【相关文献】PARKC,NOVAKJT,HELMRF,etal.Evaluationoftheextracellularproteinsinfull-scaleactivatedsludgesJ.WaterResearch,2022,42(14):3879-3889.2 SHENGGP,YUHQ,LIXY.Extracellularpolymericsubstances(EPS)ofmicrobialaggregatesinbiologicalwastewatertr

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