植物可溶性蛋白质(sprotein)酶联免疫分析

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1、植物可溶性蛋白质(sprotein)酶联免疫分析试剂盒使用说明书本试剂盒仅供研究使用。检测范围: 96T0.1ng/L - 4ng/L使用目的:本试剂盒用于测定植物组织、细胞及相关液体样本中可溶性蛋白质(sprotein)含量。 实验原理本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中植物可溶性蛋白质(sprotein)水平。用纯化的植物 可溶性蛋白质(sprotein)抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加入可溶 性蛋白质(sprotein),再与HRP标记的可溶性蛋白质(sprotein)抗体结合,形成抗体-抗原-酶标 抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物TMB显色。TMB在HRP酶的催化下

2、转化成蓝色,并 在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的可溶性蛋白质(sprotein)呈正相关。 用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中植物可溶性蛋白 质(sprotein)浓度。试剂盒组成130倍浓缩洗涤液20ml X 1 瓶7终止液6ml X 1 瓶2酶标试剂6ml X 1 瓶8标准品(8ng/L)0.5ml X 1 瓶3酶标包被板12孔X8条9标准品稀释液1.5ml X1 瓶4样品稀释液6ml X 1 瓶10说明书1份5显色剂A液6ml X 1 瓶11封板膜2张6显色剂B液6ml X 1/瓶12密封袋1个标本要求1标本采集后尽早进行提取,提取按

3、相关文献进行,提取后应尽快进行实验。若不能马上进行试验,可将标本放于-20C保存,但应避免反复冻融2. 不能检测含NaN3的样品,因NaN3抑制辣根过氧化物酶的(HRP)活性。操作步骤1. 标准品的稀释:本试剂盒提供原倍标准品一支,用户可按照下列图表在小试管中进行稀释。4ng/L5号标准品150gl的原倍标准品加入150gl标准品稀释液2ng/L4号标准品150山的5号标准品加入150山标准品稀释液1ng/L3号标准品150山的4号标准品加入150山标准品稀释液0.5ng/L2号标准品150山的3号标准品加入150山标准品稀释液0.25ng/L1号标准品150山的2号标准品加入150山标准品稀

4、释液2. 加样:分别设空白孔(空白对照孔不加样品及酶标试剂,其余各步操作相同)、标准孔、 待测样品孔。在酶标包被板上标准品准确加样50卩1,待测样品孔中先加样品稀释液40卩1, 然后再加待测样品10卩1 (样品最终稀释度为5倍)。加样将样品加于酶标板孔底部,尽 量不触及孔壁,轻轻晃动混匀。3. 温育:用封板膜封板后置37C温育30分钟。4. 配液:将30倍浓缩洗涤液用蒸馏水30倍稀释后备用5. 洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置30秒后弃去,如此 重复 5 次,拍干。6. 加酶:每孔加入酶标试剂50卩1,空白孔除外。7. 温育:操作同 3。8. 洗涤:操作同 5。9.

5、显色:每孔先加入显色剂A50y1,再加入显色剂B50y1,轻轻震荡混匀,37C避光显色 15 分钟.10. 终止:每孔加终止液50卩1,终止反应(此时蓝色立转黄色)。11. 测定:以空白空调零,450nm波长依序测量各孔的吸光度(OD值)。测定应在加终止液后15分钟以内进行。操作程序总结:计算以标准物的浓度为横坐标, OD 值为纵坐标,在坐标纸上绘出标准曲线,根据样品的 OD值由标准曲线查出相应的浓度;再乘以稀释倍数;或用标准物的浓度与OD值计算出标 准曲线的直线回归方程式,将样品的OD值代入方程式,计算出样品浓度,再乘以稀释倍数, 即为样品的实际浓度。注意事项1试剂盒从冷藏环境中取出应在室温

6、平衡15-30 分钟后方可使用,酶标包被板开封后如未 用完,板条应装入密封袋中保存。2浓洗涤液可能会有结晶析出,稀释时可在水浴中加温助溶,洗涤时不影响结果。 3各步加样均应使用加样器,并经常校对其准确性,以避免试验误差。一次加样时间最好 控制在 5 分钟内,如标本数量多,推荐使用排枪加样。4. 请每次测定的同时做标准曲线,最好做复孔。如标本中待测物质含量过高(样本OD值 大于标准品孔第一孔的OD值),请先用样品稀释液稀释一定倍数伍倍)后再测定,计 算时请最后乘以总稀释倍数(XnX5)05. 封板膜只限一次性使用,以避免交叉污染。6. 底物请避光保存。7. 严格按照说明书的操作进行,试验结果判定必须以酶标仪读数为准.8. 所有样品,洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。9. 本试剂不同批号组分不得混用。10. 如与英文说明书有异,以英文说明书为准。保存条件及有效期1. 试剂盒保存:;2-8C。2. 有效期: 6 个月

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