阿司匹林实验报告上交版

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1、阿司匹林肠溶片药物分析学号：2013515086XX：王智存班级：药学三班一、实验目的 通过对阿司匹林肠溶片的药物分析，培养药品质量全面控制的观 念，掌握药物分析研究的方法和技能。 掌握药物的鉴别、检查、含量测定的规律和方法。 掌握药物质量研究中的现代分析技术与进展。二、实验原理鉴别:显色法 杂质检查:比色法两步滴定:将一种已知准确浓度的试剂溶液，滴加到被测物质的溶液 中，直到所加的试剂与被测物质按化学计量定量反应为止，根据试 剂溶液的浓度和消耗的体积，计算被测物质的含量。紫外分光光度法：物质分子对紫外光区（波长为200-400nm ）和可见光区（波长为400-760nm）的单色光的辐射吸收有

2、不同的特性。HPLC法：混合物中各组分的色谱行为差异，将各组分从混合物中分 离后再选择性对待测组分进行分析。实验内容（阿司匹林肠溶片标示量：25mg）阿司匹林肠溶片的鉴别1. 性状鉴别本品为肠溶包衣片，除去包衣后显白色2. 化学鉴别L取本品的细粉0.3090g（约相当于阿司匹林0.1g）, 加水 10ml，煮沸，放冷，加三氯化 铁试液（9g-100ml）1滴,应显紫堇色。同时用阿司匹林对照品作对照，并做阴性干扰试 验，对照品所产生的颜色与样品相同，阴性无干扰。II.取本品的细粉1.5463g（约相当于0.5g）,加碳酸钠试液（5g-100ml）10ml,煮沸2 分钟后，放冷，加过量的稀硫酸（浓

3、硫酸57ml-1000ml）,即析出白色沉淀，并发生醋 酸的臭气.3. 薄层色谱鉴别 供试品溶液的制备：取本品细粉0.1546g（约相当于阿司匹林50 mg），加乙醇5 ml， 振摇溶解，静置，取上清液，即得。 参比物溶液的制备：取复方甲恶唑细粉0.2046g,研细，加乙醇19.45 ml溶解，静 置，取上清液即得。 对照品溶液制备：取阿司匹林对照品50mg，加乙醇5ml，振摇溶解，静置，取上清 液，即得。 取参比物溶液，对照品溶液和供试品溶液各2门，点样于硅K GF254 板（快检专用 薄层板），将正己烷-乙酸乙酯-冰乙酸（15：5：1 ）混合液8-10 ml倒人层析缸中， 将点样完毕的薄层

4、板放人，待展开前沿至距原点8 cm处，将板取出，待展开剂挥尽， 置于254 nm紫外光灯下观察，计算比移值。（二）阿司匹林肠溶片的杂质检查1、游离水杨酸取本品细粉0.3880g,用乙醇30m l分次研磨，并移人100ml容量瓶中，充分振摇， 用水稀释至刻度，摇匀，立即滤过，精密量取滤液6ml，置50ml纳氏比色管中， 用水稀释至50ml，立即加新制的稀硫酸铁铵溶液3ml，摇匀，30秒内如显色，与 对照液（精密量取0.01%水杨酸溶液4.5ml，加乙醇3ml, 0.05%酒石酸溶液1 ml， 用水稀释至50ml，再加上述新制的稀硫酸铁铵溶液3ml,摇匀）比较，不得更深.三）阿司匹林肠溶片的含量测

5、定1. 两步滴定法取本品细粉0.6121g,研细，用中性乙醇70m l分数次研磨，并移人100ml容量瓶 中，充分振摇，再用水适量洗涤研钵数次，洗液合并于100ml容量瓶中，超声处 理2min，再用水稀释至刻度，摇匀，滤过，精密量取滤液10ml（约相当于阿司匹 林0. 3g），置锥形瓶中，加中性乙醇 20mL，振摇，使阿司匹林溶解，加酚酞指 示液3 滴，滴加氢氧化钠滴定液（0.1 mol/L）至溶液显粉红色，再精密加氢氧化钠 滴定液（0.1 mol/L）40mL。置水浴上加热15分钟并时时振摇，迅速放冷至室温，用 硫酸滴定液（0.05mol/L）滴定，并将滴定结果用空白实验校正。毎Iml氢氧化

6、钠 滴定液（0.1 mol /L）相当于 18.02mg 的 C9H804。2、紫外分光光度法1）测定波长的选择精密称取阿司匹林对照品适量，加乙醇溶解成含阿司匹林80|jg/mL的溶液，在 240330 nm波长X围内扫描，得紫外吸收图谱由图谱可见，阿司匹林对照品溶 液在276 nm的波长处有最大吸收峰，且在此波长处辅料无干扰，故选定276 nm 的波长处为测定阿司匹林的波长。2）线性关系考察精密称取阿司匹林对照品250 mg置于250 mL量瓶，加乙醇溶解，摇匀，使成 1000 pg/mL的对照品溶液。精密吸取溶液2.0、3.0、4.0、5.0和6.0 mL，分置于50 mL量瓶中，加乙醇稀

7、释至刻度，分别制成40, 60, 80, 100和120 pg/mL的对 照品溶液，以乙醇为空白在276 nm波长处测定吸收度，以浓度C与相应的吸光度 A 之间的关系绘制标准曲线，进行线性回归，3）样品测定取阿司匹林肠溶片细粉0.6184g（约相当于阿司林200 mg），置250 mL量瓶中，加 乙醇适量，振摇使溶解并定容，摇匀，滤过。精密量取续滤液5 mL置50 mL量瓶 中，加乙醇稀释至刻度，摇匀。在276 nm的波长处测定吸光度.3、HPLC 法1）仪器与试药仪器:HP1100高效液相色谱仪；岛津UV-2550紫外分光光度仪；AG285电子平 试药:阿司匹林对照品；样品；甲醇为色谱纯，其

8、他试剂均为分析纯。2）方法与结果2.1 色谱条件色谱柱：Agilent Eclipse XDB-C18 （ 4.6 mmx250 mm，5 口 m）； 流动相：甲醇-1%冰醋酸溶（43:57）；检测波长：276 nm；流 速: 1 ml/min； 柱 温：30C ；进样量：20 Ml； 理论板数按阿司匹林峰计算不低于 5 000。2.2对照品溶液的制备取阿司匹林对照品25 mg,精密称定，置50 ml量瓶中，加甲醇溶液溶解并稀释至 刻度，摇匀，即得对照品贮备液；精密量取对照品贮备液10 ml,置100 ml量瓶 中，加流动相溶解并稀释至刻度，摇匀，即得对照品溶液。2.3供试品溶液的制备取本品适

9、量，除去包衣，混合均匀，研细，精密称取适量（约相当于阿司匹林 0.2 g）,置100m l容量瓶中，加甲醇溶液溶解并稀释至刻度，摇匀，再精密量取5 ml，置200 ml容量瓶中，加流动相溶液（甲醇-1%冰醋酸溶（43:57）稀释至刻 度，摇匀，用0.45 M m的微孔滤膜滤过，取续滤液即得。2.5 线性关系考察取阿司匹林对照品16 mg，精密称定，置50 ml量瓶中，加甲醇溶液溶解并稀释至 刻度，摇匀，精密量取0.5、2.5、5.0、7.0、9.0 ml分别置50 ml量瓶中以流动相溶 液稀释至刻度，精密量取各浓度对照品溶液20 口l,注人液相色谱仪，测定色谱峰 面积。以对照品进样量（口g）为

10、横坐标，峰面积为纵坐标，计算回归方程，结果 表明阿司匹林进样量在3.242 - 58.356 口gX围内，呈良好的线性关系。2.7）样品的测定分别取对照品溶液和供试品溶液20uL，注人高效液相色谱仪，记录色谱图，以 峰面积外标法计算标示量的百分含量.四、实验结果（一）阿司匹林肠溶片的鉴别1. 水杨酸反应：显紫堇色，与药典记载一致。证明供试品确实为阿司匹林肠溶片。2. 乙酰水杨酸的水解反应：析出白色沉淀，并放出醋酸的臭味，与药典记载一致。证明 供试品确实为阿司匹林肠溶片。3. 薄层色谱鉴别：比移值第一组供试品0.53对照品0.52参比0.39第二组供试品0.54对照品0.54参比0.44供试品与

11、对照品的比移值基本相同，证明供试品中确实为阿司匹林肠溶片。（二）阿司匹林肠溶片的杂质检查游离水杨酸的检查：对照品溶液的颜色比供试品溶液的颜色深。证明供试品中游离水 杨酸的含量未超过杂质限量。三)阿司匹林肠溶片的含量测定1.两步滴定法(AV:V-V T:滴定度；F:校正因子;0计算公式：百分标示量二AV T FW W - B项目消耗硫酸体积(mL)百分标示量()平均百分标示量 (%)111.0073.2供试品211.1260.776.00310.8094.1空白11.70w :平均片重；W：取样量；B：标示量)已知:0.1149F= 49 =1.149;T=18.02mg;0.12、紫外分光光度

12、法浓度(ug/mL)吸光度A1吸光度A2吸光度A3吸光度均值400.3780.3790.3800.379600.4550.4550.4520.454800.5720.5720.5830.5761000.6080.6080.6090.6081200.8230.8250.8250.824计算公式：百分标示量=巳巴（C：浓度；D:稀释倍数；w :平均片重；W:取样 W - B量；B：标示量）吸光度（A）浓度(ug/mL)百分标示量（）平均百分标示 量（）供试品10.53874.593.12592.96供试品20.53774.392.875供试品30.53774.392.875供试品中阿司匹林的百分标

13、示量为92.96%。3、 HPLC 法线性关系考察结果:阿司匹林在取样X围内没有良好的线性关系，所做数据不能使用。 五、讨论与反思1) 薄层色谱鉴别过程中，第一组对照品与供试品 的比移值并不完全相同，而第二组的却相同，后来查看薄层板的 过程中发现其溶剂前沿并没有薄层板底部平行，因此出现操作错 误。理论上两者的比移值应该是完全相同的。2) 含量测定三种方法的平行比较I、两步滴定:此法所用仪器价廉易得，操作简单快速，且影响本 法的试验条件与环境因素较少，但是人为误差比较大。本实验所需 的中性醇、滴定液、酚酞试液均为实验组不同组员配置，并非为标 准试剂，存在误差在所难免，且每个人对滴定终点颜色的判断

14、不 一，会导致误差出现。因为本次试验的供试品为阿司匹林肠溶片， 而两步滴定的专属性较差，对于结构相近的有关物质或其他干扰测 定的杂质缺乏选择性，肠溶片的包衣、辅料等物质会对滴定产生干 扰，因此出现误差较大。综上所述，在阿司匹林肠溶片合格的前提 下所测的百分表示量偏低原因可能为： 所用试剂配置未达到标准要求 片剂中相关辅料对滴定产生干扰 实验组不同人员操作误差II、紫外分光光度法：此法所用仪器价格适中，操作简单，易于 普及。而且此法的灵敏度较高，对较低浓度的分析比较准确，相 对误差较小。实验组人员将测试所需供试品溶液配置完成后只用 了半小时就完成了紫外的数据测量。本法出现人为误差的可能性 较小，

15、方法简便易行。使用此法测得的百分标示量为92.96% ，在正常的X围内。III、HPLC法：此法的灵敏度高，浓度再低也可以检测岀，而且 可以有效的分离出样品中的其他物质，具有较高的专属性，可实 现对待测组分的选择性检验。但是此法所需仪器昂贵，不易普 及。测量过程中对操作的专业性要求较高，操作步骤繁琐，稍许 操作不当便容易前功尽弃，要求试验的连贯性，耗时较长。实验 组成员用了两天的时间才学会了仪器的操作，但所得的实验数据 并没有良好的线性关系，不能使用。分析其原因可能有 仪器操作不熟练，对实验数据缺乏敏感性。 仪器清洗不到位，残留上组实验的供试品成分。 供试品溶液的配置过程中岀现操作误差，导致保

16、留时间和峰面 积与文献记载不一致。 实验所用的微孔滤膜与文献记载不一致。 实验所用阿司匹林对照品并未达到要求。综上所述：两步滴定法虽操作简便，但对制剂分析的专属性差 且容易岀现人为操作误差，高效液相色谱法虽灵敏度高专属性好但 是操作过程繁琐，耗时长。紫外分光光度法准确度高，操作简便。 一般实验强烈推荐使用紫外分光光度法来做制剂的含量测定。六、实验心得第一次自主设计实验，独立的完成所有的实验内容，真的是感 受颇深。没有老师在旁边的指导,更没有准备完全的各种所需试剂， 一切都要自己查文献，查药典，找数据。本来觉得是简简单单的小 实验，自己上手操作了一周，才觉得真的是太高看自己了。通过这 次试验，也

17、总结了几点体会，算是给自己的研究生道路先打上基 础。从实验的第一天开始，就要自己设计实验，如果实验设计没有 通过老师的审核，还要重新修改，不然连实验室都进不了。因为我 们实验组组长有做过SRP实验，所以经她修改的实验设计顺利通过 了第一关。刚开始还有点暗自庆幸，原来还是挺轻松的。做物质鉴 别和杂质检查的时候才发现，原来所需的试剂都是要自己配制的， 药典记载碳酸钠试液，酚酞试液、氯化铁试液、稀硫酸等等，都是 要自己亲手配置，这才知道原来实验的工作量还挺大的。做含量测 定的时候，用的时间最长。两步滴定所需的标准试剂都需要自己配 置，这个看起来最简单的实验重新做了两次才达到所需的效果。紫 外做起来比

18、较快，最艰难的是高效液相，因为熟悉仪器操作的人太 少了，所以中间出来不少差错，而且一个实验组要完成一次完整的 数据收集，至少需要6 个小时！等了两天才排上队，因为第一次操 作，并不熟练，虽然等到晚上十一点才测完，处理数据的时候才发 现数据并没有用，因为没有规律。总结一周的实验，主要有以下几点体会：1) 实验设计一定要结合自己的仪器操作能力和实验室的现有条件。因为我们实验室只有两台好用的高效液相色谱 仪，所以大家都要用就特别耗时。虽然在课堂上学过高效液相色 谱的原理，但是第一次操作真的是错误百出，并且所得的数据还 不能用。如果对它操作熟悉的话发现数据异常就可以重新再测， 但是缺乏对数据的敏感性。

19、2) 设计实验时要有整体统筹观念。合理的安排试 验的进展是很重要的，要了解别的小组的实验进展，观察比较其 所用的实验仪器与自己的实验仪器是否有冲突。灵活调整自己的 实验进度以保证实验能够顺利连贯的进行。3) 合理的分工与协作必不可少。至少要有一个可 以拿主意的人，碰到对实验中出现的问题有分歧的时候可以迅速 的做出正确的选择与判断，而不是炒成一锅粥，最终问题也没有 解决。实验开始之前要安排好每个人的任务以及进行的先后次 序，这样可以事半功倍。4) 善于学习。每个实验组进行的快慢不同，顺序 也不同。可以去向实验进行的快的小组去取取经，总结实验失败 的原因和成功的原因以及一些注意事项，可以避免自己的实验也 出现相同的问题。