核酸化学翻译.doc

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1、成纤维生长因子-21通过激活AMPKSIRT1PGC-1信号通路调节能量代谢成纤维细胞生长因子-21已经被证实是一种潜在的代谢调节因子。对经饮食诱导或遗传的肥胖的糖尿病啮齿类和恒河猴施用重组成纤维细胞生长因子-21后,其表现出了很强的抗高血糖和降低甘油三酯并减轻体重的作用。尽管成纤维细胞生长因子-21在调节葡萄糖、脂质和能量平衡中发挥了重要的作用,但是成纤维细胞生长因子作为一种代谢调节因子的作用机制仍然不是很清楚。本实验证明了,成纤维细胞生长因子-21是通过激活AMP激活蛋白激酶(AMPK)和SIRT1,从而增强了线粒体的氧化能力,对脂肪组织细胞进行能量平衡的调节的。FGF-21作用于来自OB

2、/OB小鼠的脂肪细胞和白色脂肪组织都增强了AMPK的磷酸化水平。FGF-21的应用增强了细胞内的NAD+水平,从而激活了SIRT1及对其下游的靶位点进行了脱乙酰基作用,过氧化物酶体增殖子激活受体-辅助因子-1 (PGC-1)和第3位组氨酸。FGF-21作用脂肪细胞后激活了AMPK和SIRT1,进而增强了线粒体氧化能力,表现为耗氧量、柠檬酸合成酶的活性的增加,以及诱导关键代谢基因的转录与表达。FGF-21增强线粒体功能的能力需要丝氨酸-苏氨酸激酶11 (STK11/LKB1),STK11/LKB1可以激活AMPK .抑制了AMPK,SIRT1和PGC- 1的活性,FGF-21对氧耗和基因表达的影

3、响降低了,这表明FGF-21的调节线粒体功能和增加氧化能力是通过依赖AMPKSIRT1PGC1信号通路的这一机制在脂肪细胞细胞中实现的。AMP激活蛋白激酶(AMPK)是一个主要能量代谢效应器和主要的代谢平衡的调节因子。LKB1,一种丝苏氨酸激酶,是激活AMPK的主要调节因子。LKB1直接对AMPK的第172位的苏氨酸进行磷酸化进而激活AMPK激酶的活力。LKB1的表达是由运动诱导的,它作为肝脏中葡萄糖生成的关键介质之一。最近,AMPK被指出,其在治疗二型糖尿病及代谢综合症的基本疗法中,如二甲双胍、噻唑啉二酮类、运动等发挥了重要作用。AMPK的激活,开启了分解代谢通路,增强氧化代谢和线粒体的生物

4、合成,从而维持了能量平衡。最近,AMPK被发现通过增加细胞内NAD+ 水平来增强NAD+依赖的三型脱乙酰化酶SIRT1的活性,从而调节SIRT1下游靶位点的基因的活性。SIRT1在哺乳动物调节代谢功能和延长寿命中起到了重要作用。SIRT1的激活同样利于营养物质的选择性利用和通过增强线粒体氧化功能调节能量平衡。AMPK 和SIRT1通过协同作用,对线粒体生物合成,PGC-1进行调节,从而调节机体对环境和营养的刺激后的能量平衡。PGC-1通过与多种转录因子相互作用来刺激线粒体的代谢调节能力。成纤维细胞生长因子-21已经被证实是一种潜在的代谢调节因子。对经饮食诱导或遗传的肥胖的糖尿病啮齿类和恒河猴施

5、用重组成纤维细胞生长因子-21后,其表现出了很强的抗高血糖和降低甘油三酯并减轻体重的作用。最近研究表明,-klotho,是一种与klotho相似的单次跨膜蛋白,最为一种FGF-21的信号的辅助受体因子来发挥其作用。由于-klotho在FGF-21信号中,作为一种关键的辅助因子,所以它的表达使得FGF-21仅在肝脏、胰脏和脂肪细胞组织中特异性表达,因为-klotho主要在这些部位表达。最近,FGF-21在肝脏中的作用已被证实,FGF-21在饥饿中对能量平衡起到了重要的调节作用。FGF-21可通过禁食诱导表达。在禁食中,肝脏中脂肪氧化、甘油三酯的清除及生酮代谢中,都需要FGF-21的存在。尽管,F

6、GF-21在肝脏代谢调节中起到了重要的作用,但是我们对于其在脂肪组织中所起到的作用还知道的很少。此外,FGF-21在调节葡萄糖和能力平衡中的作用机制,我们仍然不清楚。这里我们证明了FGF-21是在脂肪细胞中,通过LKB1激活来调节AMPK和SIRT1的活性来调节能量消耗的。FGF-21改变了细胞内NAD+的水平,导致SIRT1的激活,其下游靶基因的脱乙酰基化,即PGC-1 and histone 3 (H3)。这些关键代谢效应器的激活,导致了线粒体氧化功能的增加,从而阐明了FGF-21在代谢调节中的作用。结果FGF-21增强了AMPK 的活性 为了深入研究FGF-21调节能量消耗的作用机制,我

7、们用FGF-21 (4.0 g/mL)处理3T3-L1细胞3天,通过Western blot来分析被激活的AMPK的水平。FGF-21的作用,使磷酸化的AMPK增加了53% (P 0.05; n = 3),但是AMPK总蛋白(t-AMPK)的水平始终没有改变(Fig. 1A).有趣的是,FGF-21 (4.0 g/mL for 3 d)作用于分化的人的脂肪细胞后,使得p-AMPK (P 0.05;n = 3)有了很大的增加(58%),但是t-AMPK的水平没有改变(Fig. 1B).。对人脂肪细胞用腺病毒过表达AMPK的alpha2 亚单位的副结构域(DN-AMPK)抑制AMPK的活性,消除了

8、FGF-21刺激P-AMPK的增加(Fig. 1B)。Fig.1.FGF-21增强了AMPK的活性。(A和B)Western blot 和(A)用FGF21 (4.0 g/mL)处理3天的3T3-L1细胞中P-AMPK的定量和(B)用FGF21 (4.0 g/mL)处理3天的人的脂肪细胞中P-AMPK的定量。数据是三次单独实验的平均值。(C和D)是Western blot和在WAT中(C)p-AMPK和(D)p-ACC,空白对照组,FGF-21处理组,对照处理组中,n = 8 animals/group. *P 0.05 (Students t test). *P 0.01.为了探索FGF-2

9、1在体内是否增加AMPK的活性,我们用渗透泵连续的给ob/ob小鼠灌注重组人FGF-21蛋白来两周。与以前的报告一致,FGF-21的作用导致了总体重的显著降低 (Fig. S1A),这与10到14天中少量但是显著的摄食量下降伴随着发生(Fig. S1B)。身体和组织的组成测定发现,FGF-21处理后的动物体中,总的身体中的脂肪的质量和肝脏脂肪的含量都有明显的下降(Fig. S1C).我们分析对照组和FGF-21实验组老鼠体内的WAT中的P-AMPK的含量时,FGF-21实验组老鼠体内的WAT中的P-AMPK的含量增加了53%,表明增加了AMPK的激活(Fig. 1C).这些数据说明,FGF-2

10、1通过激活AMPK来调节能量消耗。为了确定FGF-21的作用是否不依赖于体重,我们做了对照饲养研究实验来比较对照组和FGF-21处理组的体重。与之前的研究一致,FGF-21处理的老鼠未禁食的血糖水平被明显降低,而对照组则没有(Fig. S1D).。一个口服葡萄糖耐受实验显示,FGF-21处理后可明显提高葡萄糖的耐受(Fig. S1E)并且降低至曲线下的区域为45% (Fig. S1F).重要的是,FGF-21处理组动物的p-AMPK的水平增加了53%,但是在对照组中则没有(Fig. 1C).此外,FGF-21处理的动物的P-ACC的水平增加了(66%),它是AMPK下游的一个靶基因(Fig.

11、1D).这些数据表明FGF-21可以增强细胞内AMPK的激酶的活性。这些结果说明,FGF-21对能量平衡的影响与AMPK激活是对立的改变体重的。FGF-21增加NAD+新城代谢和SIRT1的活性 现在,已经被证明,AMPK直接通过调节胞内NAD+/NADH的水平来直接激活SIRT1(8).因为FGF-21增加AMPK的活性,我们猜测FGF-21是否能改变胞内NAD+/NADH的水平。与我们的假设一致,FGF-21分别使3T3-L1细胞和人脂肪细胞中的NAD+/NADH增加了48% (P 0.05;n = 3) 和52% (P 0.05, n = 3) (Fig. 2 A and C).重要的是

12、,NAD+/NADH的水平,在FGF-21处理的ob/ob的WAT中增加了40%(P 0.05, n = 8),但是空白对照组中却没有(Fig. 2B).用DN-AMPK抑制AMPK的活性,降低了FGF-21刺激的NAD+/NADH的增加,说明FGF-21激活AMPK在SIRT1激活的上游。 为了确定FGF-21诱导的升高的NAD+/NADH是否影响SIRT1的活性,我们确定了已知的SIRT1底物的乙酰化作用模型PGC-1 and H3. 3T3-L1脂肪细胞被转染进腺病毒表达的shRNA的不含SIRT1的和腺病毒表达的一个FlagPGC-1结构。转染的细胞用FGF21 (4.0 g/mL)

13、处理 3 d。用FGF-21处理过的3T3-L1脂肪细胞PGC-1 的乙酰化降低了28% (P 0.05;n = 3),.shRNA敲出SIRT1 (Fig. 2D)的基因,降低了它的影响。此外,在降低H3的乙酰化水平上 (68%;P 0.05; n = 8) 经过FGF21处理的老鼠要比空白对照组明显(Fig. 2E). 这些数据表明,在体外脂肪细胞中,FGF21 改变 NAD+代谢水平并且激活了 SIRT1 a的活性。总之,这些结果表明FGF-21是通过激活AMPK 和SIRT1来控制能量代谢的。FGF-21增加线粒体基因和蛋白的表达 AMPK和 SIRT1都是线粒体生物合成的关键调节因子

14、。为了检验FGF-21在线粒体生物合成和功能中的作用,我们对3T3-L1脂肪细胞进行荧光定量PCR来测定线粒体功能相关基因的表达。FGF-21处理3T3-L1脂肪细胞后,导致其CPT1a的显著增加(CPT1a是参与游离脂肪酸跨线粒体膜进行脂肪-氧化),Idh3a增加了1.6倍(是TCA循环的限速步骤),CytC增加了 (Fig. S2A).2.1倍。此外,这些基因水平上的改变相互关联,增加了Cyt A蛋白的表达水平(6%; P 0.05; n = 3; Fig. 3A).此外,FGF21处理人的脂肪细胞后,显著增加了与线粒体生物合成、-脂肪酸氧化,包括CPT1a (45%), PPAR( 23

15、%), 和PGC-1 (20%)的表达 (Fig. S2C).这些基因表达水平的改变也导致了CytC蛋白的表达水平 (P 0.05; n = 3) (Fig. 3B).Fig2.FGF-21增加细胞内的NAD+并且降低H3的乙酰化作用。(A)NAD+/NADH在3T3-L1脂肪细胞中的水平。3T3-L1脂肪细胞是经过FGF-21 (4.0 g/mL; black bars) 或者 PBS空白处理3天。(B))NAD+/NADH在对照组,FGF-21实验组,和空白组老鼠(N=8只动物/组)的WAT中的水平。(C))NAD+/NADH在人的脂肪细胞中,用腺病毒表达对照载体和DN-AMPK转染脂肪细

16、胞.转染后的脂肪细胞用 FGF21 (4.0 g/mL)或者;PBS 处理。(D)Western blot定量检测3T3-L1细胞中(Ac-PGC-1) 3T3-L1 脂肪细胞经过腺病毒表达SIRT1-shRNA 和FlagPGC-1adipocytes 。 FlagPGC-1 是用表面乙酰化的赖氨酸抗体免疫沉淀和点杂交的。 t-PGC-1, 是总的 PGC-1.(E)Western blot定量检测在对照组,FGF-21实验组,和空白组老鼠(N=8只动物/组)的WAT中的Ac-H3的水平。所以的数据都是通过三个独立的实验的平均值得来的。N=8只/组*P 0.05 (学生实验).FGF-21曾

17、经被证明其能在体内增加基因的表达。因此,我们检测了实验组的WAT中线粒体蛋白的表达水平。FGF-21处理的实验组动物的CytC蛋白的表达水平增加了32%(P 0.05; n = 8),在对照组或者对照鼠中,没有改变(Fig. 3C).FGF-21增强线粒体的氧化能力 为了更深入的了解FGF-21对线粒体功能的影响,我们检测了FGF-21处理的3T3-L1细胞中,线粒体酶的活性,主要是检测柠檬酸合酶的活性,它是TCA循环中的一个关键的组成部分。FGF-21显著增加了柠檬酸合酶的活力,大约增加了1.7倍,表明FGF-21增强了TCA循环的活力。为了进一步了解FGF-21在增加线粒体氧化功能的能力,

18、我们测定了FGF21处理后的 3T3-L1 和人的脂肪细胞的氧耗量。FGF-21增加了基础氧耗量达1.2倍 (P 0.05; n = 3)并且增加了寡霉素处理后的3T3-L1细胞的氧耗量达1.3倍(P 0.05; n = 3; Fig. 3E). FCCP是一种化学耦合器,它能废除呼吸链和氧化磷酸化系统之间的联系,并且最大化的增加线粒体的呼吸能力。FGF-21处理后的3T3-L1细胞中,显著增强了FCCP刺激氧耗的能力,分别增加了1.9和1.7倍(P 0.01; n = 3),表明FGF-21增加了氧耗,并且增强了氧化能力(Fig. 3 E and F).。FGF-21在对线粒体功能的影响时,

19、需要LKB1, AMPK, and SIRT1的帮助 为了确定FGF-21诱导的对线粒体功能的刺激是否需要AMPK,我们有新病毒表达DN-AMPK来转染人的脂肪细胞。用DN-AMPK抑制AMPK的活性,降低了FGF-21刺激增加CPT-1a and PGC-1 基因表达和增加氧耗的能力 (Fig. 4B).因为LKB1调节AMPK的活性,我们通过使用慢性病毒表达shRNA而不表达LKB1和对照shRNA来预测FGF-21在线粒体功能的作用是否也需要LKB1。含LKB1-shRNA的慢病毒转导后的PBS 和FGF-21处理后的脂肪细胞LKB1 mRNA 的水平增加了大于70%(Fig. 4C).

20、 FGF21显著增强了在基础水平上的氧耗率(1.3-fold;P 0.01; n = 3) 和 FCCP 的处理(1.4-fold; P 0.001;n = 3) (Fig. 4D).因为AMPK激活SIRT1,我们接下来要探讨AMPK下游的SIRT1是否介导FGF-21对线粒体功能的影响用腺病毒转染3T3-L1脂肪细胞表达SIRT1-shRNA 或者对照 shRNA.这些细胞是经过FGF21 (4.0 g/mL)处理3天。在PBS- and FGF21处理后的 3T3-L1 脂肪细胞中SIRT1 mRNA 水平被SIRT1-shRNA降低了大于 60% 。FGF21的作用显著增加了在基础水平

21、上的氧耗率(1.5-fold; P 0.05; n = 3),同样的效果也表现在寡霉素处理的细胞中(1.4-fold; P 0.05; n = 3) 和 FCCP(1.7-fold; P 0.01; n = 3) 处理的细胞中(Fig. 4F). FGF21诱导氧耗量的增加的能力在用shRNA敲出的SIRT1基因后有所降低 (Fig. 4F).总之,结果证明FGF-21是通过依赖 LKB1-,AMPK-, and SIRT1通路来增强线粒体功能的。Fig3.为FGF-21在(A)FGF-21处理后的3T3-L1细胞和(B)人脂肪细胞,空白,PBS处理,背景空白,FGF-21处理中增加线粒体蛋白

22、的表达和功能CytC蛋白水平的结果分析。(C)CytC 蛋白的水平在对照组, FGF21处理的实验组,和 空白组老鼠的WAT中 (D)CS 的活性FGF-21处理的3T3-L1 的脂肪细胞. (E)氧耗量在3T3-L1 细胞 和 (F)人的脂肪细胞用 PBS (white bars) 或FGF21(black bars). 数据是三次独立实验的平均值. *P 0.05;*P 0.01 (Students t test).Fig. 4. FGF21 effects in adipocytes require AMPK activity. (A)Gene expression in human a

23、dipocytes infected with adeno-virus expressing DN-AMPK or GFP (Ctrl) and treated with PBS(white bars) or FGF21 (black bars). (B) Oxygen consumption inhuman adipocytes infected with adenovirus expressing DN-AMPK or GFP (Ctrl) and treated with PBS (white bars) orFGF21 (black bars). (C) Gene expression

24、 in human adipocytesinfected with lentivirus expressing shRNA against LKB1 orcontrol shRNA (Ctrl) and treated with PBS (white bars) or FGF21 (black bars). (D) Oxygen consumption in 3T3-L1 adipo-cytes infected with lentivirus expressing shRNA against LKB1or control shRNA (Ctrl) and treated with PBS (

25、white bars) orFGF21 (black bars). (E) Gene expression in human adipocytesinfected with adenovirus expressing shRNA against SIRT1 orcontrol shRNA (Ctrl) and treated with PBS (white bars) orFGF21 (black bars). (F) Oxygen consumption in 3T3-L1 adipo-cytes infected with adenovirus expressing shRNA again

26、st SIRT1or control shRNA (Ctrl) and treated with PBS (white bars) orFGF21 (black bars). Data are averages of three independentexperiments. All gene-expression data are quantitative RT-PCRs,normalized to the housekeeping gene, TATA box binding pro-tein. *P 0.05; *P 0.01 (Students t test). *P 0.001.FG

27、F21介导的影响线粒体功能上需要PGC-1 因为AMPK 和 SIRT1 都调节PGC-1 表达和活性,我们通过定量PCR来鉴定FGF-21处理的3T3-L1脂肪细胞中PGC-1的增加。有趣的是,经过处理的细胞中,FGF21 并没有表现出增加PGC-1的mRNA的表达(Fig. 5A).可是,我们发现FGF21通过对 SIRT1的去乙酰化来调节PGC-1的活性(Fig. 2D).为了验证FGF-21调节线粒体的功能是否需要PGC-1,我们完成了3T3-L1细胞中shRNA敲出研究。在经过PGC-1shRNA 转染的3T3-L1脂肪细胞与空白相比PGC-1 的mRNA 水平降低了大于70% 在3

28、T3-L1脂肪细胞中(Fig. 5A).敲除了PGC-1降低了FGF-21在CTP-1a 和CytC基因表达上的影响,完全抑制了FGF21诱导的氧耗量的在基础水平上,与寡霉素和FCCP处理的结果同(Fig. 5B)。因此,我们的结果显示,FGF-21在调节线粒体功能的综合作用中需要PGC-1.。Fig. 5. FGF21 effects in adipocytes require PGC-1. (A) PGC-1 expression in 3T3-L1 adipocytes infected with shRNA-cytomegalovirus (CMV) (Ctrl) or shRNAPG

29、C-1 adenovirus and treated with PBS (white bars) or FGF21 (black bars). Data shown are from quantitative RT-PCRs, normalized to the housekeeping gene,TATA box binding protein. (B) Oxygen consumption in 3T3-L1 adipocytes infected with shRNA-CMV (Ctrl) or shRNAPGC-1 adenovirus and treated with PBS(whi

30、te bars) or FGF21 (black bars). Data are averages of three independent experiments. *P 0.05; *P 0.01 (Students t test). (C) Schematic diagramshowing FGF21 activation of AMPK via LKB1, which indirectly activates SIRT1 by increasing the cellular NAD+/NADH ratio. The pathway converges on reg-ulation of

31、 PGC-1 activity and, ultimately, on mitochondrial oxidative function.讨论这里 我们证实了FGF21能通过增强线粒体的功能和效率来调节能量的自我平衡,这是通过在体内外的实验中增强AMPK和SIRT1实现的。在图5C中我们的数据提供了FGF21的工作模型。FGF21通过LKB1增加了AMPK的磷酸化水平。AMPK的激活导致了细胞内NAD+水平的增加,又激活了SIRT1随后影响了多种代谢通路。这里我们调查了调节线粒体氧化功能的通路。结果显示FGF21在增加线粒体功能上的效果是通过PGC1-介导的。再FGF21治疗的脂肪细胞中,AM

32、PK和SIRT1的活化集中增强了线粒体的氧化功能,包括氧耗量的增加,柠檬酸合成酶的活性以及一些关键代谢基因的诱导,这些基因包括CPT1和CytC。通过显性失活和shRNA腺病毒和慢病毒来抑制LKB1,AMPK和SIRT1的活性弱化了FGF-21在氧耗量和基因表达方面的作用,显示FGF-21是通过依赖于AMPK和SIRT1的机制来调节线粒体功能和增加氧容量。在体内外实验中我们都观察到FGF-21对AMPK和SIRT1的作用,证明这些作用很可能直接与体重和肥胖的变化有关而非间接地。等人已经证实,在脂肪形成过程中,PPAR的配体结合域的个螺旋对于PPAR对内源性配体的应答是必须的,同样对于一些小分子

33、的表达也是必须的如。这些小分子基因的表达式受SIRT1抑制的,使SIRT1抑制能够产生与PPAR配体相同的作用效果。有趣的是,我们的结果还证实了,在用FGF-21治疗肥胖的过程中抑制了PPAR的表达增强了AMPK和SIRT1的活性,很有可能SIRT1抑制FGF-21的表达在脂肪形成过程中是必要的,但是在成熟的脂肪细胞中FGF-21能增强SIRT1的活性来维持能量的自我平衡。等人先前证明FGF-21在中能诱导PGC1-的表达,与他们的结果相一致,我们也证实FGF-21在线粒体功能上起作用需要PGC1-,我们进一步显示了FGF-21能增加AMPK和SIRT1的活性与PGC1-协同作用来维持能量的自

34、我平衡。最近通过饥饿实验表明PGC1-能够下调肝脏中FGF-21的表达。在老鼠中慢性的减少PGC1-的表达能够增加FGF-21的表达。当PGC1-水平很低FGF-21能介导生酮作用,这种情况下动物代谢水平与饥饿情况相似。与先前的研究相似,FGF-21在肝脏的脂代谢中起作用需要PGC1-,我们的结果显示用治疗肥胖能增肌线粒体的氧容量同时也需要PGC1-。与我们的假说相一致,使用FGF-21治疗肥胖小鼠引出了本来的代谢作用与过表达SIRT1的转基因小鼠相似。FGF-21治疗的和SIRT1转基因的都显示体重,血浆中胰岛素及葡萄糖水平的下降也增强了葡萄糖的耐受性。另外,使用AMPK激活因子如二甲双胍引

35、起的代谢作用与FGF-21相似包括葡萄糖的下降。我们观察到在FGF-21治疗的小鼠中产生了汇聚性的生物学效应如AMPK和SIRT1的活化与我们的假说FGF-21能够诱导AMPK和SIRT1的活性相一致。我们结果显示FGF-21能通过LKB1激活AMPK的活性,FGF-21对线粒体功能起作用需要LKB1。FGF-21的信号通路是通过-klotho和FGF受体介导了ERK 1/2的活化从而调节了LKB1的活性。很有可能FGF-21是通过ERK 1/2和LKB1相互作用来调节AMPK的。FGF的作用限于表达-klotho的组织,包括肝脏胰腺和脂肪组织。我们的研究显示FGF-21在脂肪组织中能够刺激A

36、MPK和SIRT1的活性。最近发现FGF-21能增加PGC1-的表达以及激活肝脏中脂肪酸氧化和三羧酸循环。将会很有意思去确定FGF-21在肝脏中是否能激活AMPK和SIRT1的活性与PGC1-协调一致作用。先前研究已经证明FGF-21能够保护胰岛细胞免受糖脂毒性诱导的细胞凋亡和功能障碍,已经证实SIRT1和NAD的代谢在胰岛的功能和代谢上起到关键作用,也很有兴趣去研究FGF-21在细胞存活和功能上是受SIRT1介导的。很有可能FGF-21在这些通路中的作用在其他的组织中也有发生,例如肝脏胰腺和脂肪组织中,他们共同调节了能量的自我平衡。总之,我们的结果揭示了FGF-21增强线粒体功能和氧化能力的

37、大体过程。FGF-21主要通过激活AMPK和SIRT1以及他们下游靶位点, 包括脂肪细胞中的PGC-1。因此,对于这些改变的综合反映生理的能力生产和脂肪酸的氧化提高了脂肪酶和胰岛素的敏感性,表明了FGF-21在代谢调节上的优势。我们的在人的脂肪细胞的结果显示,在啮齿类和人的细胞中对线粒体功能有相同的促进作用,也表现出了FGF-21在治疗肥胖和二型糖尿病上的潜在价值。方法动物及治疗 8周龄的雄性ob/ob小鼠来源于杰克逊实验室,所有的操作过程都符合美国健康管理局及人类服务中心的标准,也得到动物保护及 委员会的批准。小鼠随机分配成治疗组和空白组。通过饮食时的体重指数和血糖水平进行区分,空白对照组给

38、予PBS,治疗组通过渗透泵持续给予FGF-21皮下注射。通过尾静脉采血,血糖通过精确的G葡糖糖测试系统,禁食过夜后进行葡糖糖耐受实验,装载量为1G/KG.细胞培养 体外治疗 腺病毒转染 3T3-L1细胞来源于美国细胞培养中心,3T3-L1在生长培养基中会发生富集,将细胞孵育在分化培养基中进行分化,时间为四天,然后再孵育在生长培养基中四天,让其完全的脂肪细胞转变。在第八天,细胞孵育在加油FGF-21(4ug/ml)或者PBS的生长培养基中,孵育72小时.每24小时进行换液。人脂肪细胞来源于细胞应用中心,人前脂肪细胞在前脂肪细胞中培养进行富集,将细胞在分化培养基中分化10天进行分化培养。对于基因沉

39、默实验,通过脂质体转染,将表达阻抗SIRT1 、PGC-1 等基因表达的腺病毒shRNA转染进人的3T3-L1细胞。对于LKB1的基因沉默,通过慢病毒转染shRNA阻抗LKB1基因的表达。LKB1-shRNA慢病毒是从Santa Cruz 生物技术中心购买的。DN-AMPK2购买于Eto生物科学中心,对于PGC-1 乙酰化实验,通过表达SIRT1-shRNA慢病毒感染3T3-L1细胞。表达和纯化重组人的FGF-21 cDNA编码位于TEV酶切位点后的N端带有六个HIS标签33209的氨基酸残基,克隆在pET-15b的NcoI和Xhol位点之间。HIS标签可以通过TEV蛋白酶切除,样品之后可以进

40、行5K分子量浓缩,然后泵入Superd ex 200的凝胶柱,用PBS平衡柱子,蛋白浓度通过Bradford蛋白法。RNA分离 逆转录 荧光定量PCR RNA通过TRIzo试剂从细胞和组织中提取出来,再通过Qi agen RNA酶试剂盒进行纯化,分离的RNA按照试验步骤逆转录成cDNA,样品一式三份通过ABI Prism 790 0H T进行荧光定量PCR,试验需要的引物及探针来源于A pplied B iosystems.氧消耗及柠檬酸合成活性试验 柠檬酸合成活性通过柠檬酸合成试剂盒检测,总共需要2ug蛋白进行试验,XF24细胞外流量分析进行氧消耗量检测,氧消耗量通过fi xed delta

41、机器产生的斜率进行计算。NAD+/NADH and CytC 的分析. NAD+和 NADH 的水平是通过 NAD/NADH分析试剂盒来确定(购自Abcam). CytC 蛋白的水平是通过 CytC ELISA 来测定的(通过R&D 系统获得)。蛋白免疫印迹和免疫沉淀反应 在裂解缓冲液(含有蛋白酶和磷酸盐抑制剂)中裂解细胞,裂解物超声破碎1min,4C14,000g离心10min,为了进行免疫沉淀实验,将800g的蛋白在4C与带有抗Flag的琼脂糖颗粒孵育,跑SDS-PAGE胶并转移到硝酸纤维素膜上统计分析 数据的分析使用的是学生实验差异显著用星号表示参考文献1. Hardie DG (200

42、7) AMP-activated/SNF1 protein kinases: Conserved guardians ofcellular energy. Nat Rev Mol Cell Biol 8:774785.2. Shaw RJ, et al. (2004) The tumor suppressor LKB1 kinase directly activates AMP-activated kinase and regulates apoptosis in response to energy stress. Proc Natl AcadSci USA 101:33293335.3.

43、Shaw RJ, et al. (2005) The kinase LKB1 mediates glucose homeostasis in liver andtherapeutic effects of metformin. Science 310:16421646.4. Zhou GC, et al. (2001) Role of AMP-activated protein kinase in mechanism ofmetformin action. J Clin Invest 108:11671174.5. Fryer LGD, Parbu-Patel A, Carling D (20

44、02) The anti-diabetic drugs rosiglitazone andmetformin stimulate AMP-activated protein kinase through distinct signaling pathways.J Biol Chem 277:2522625232.6. Barnes BR, et al. (2005) Changes in exercise-induced gene expression in 5-AMP-activated protein kinase gamma3-null and gamma3 R225Q transgen

45、ic mice. Diabetes54:34843489.7. Narkar VA, et al. (2009) AMPK and PPARd agonists are exercise mimetics. Cell 134:405415.8. Cant C, et al. (2009) AMPK regulates energy expenditure by modulating NAD+metabolism and SIRT1 activity. Nature 458:10561060.9. Bordone L, Guarente L (2005) Calorie restriction,

46、 SIRT1 and metabolism: Understandinglongevity. Nat Rev Mol Cell Biol 6:298305.10. Rodgers JT, Lerin C, Gerhart-Hines Z, Puigserver P (2008) Metabolic adaptationsthrough the PGC-1 alpha and SIRT1 pathways. FEBS Lett 582:4653.11. Reznick RM, Shulman GI (2006) The role of AMP-activated protein kinase i

47、nmitochondrial biogenesis. J Physiol 574:3339.12. Wu Z, et al. (1999) Mechanisms controlling mitochondrial biogenesis and respirationthrough the thermogenic coactivator PGC-1. Cell 98:115124.13. Coskun T, et al. (2008) Fibroblast growth factor 21 corrects obesity in mice.Endocrinology 149:60186027.1

48、4. Kharitonenkov A, et al. (2005) FGF-21 as a novel metabolic regulator. J Clin Invest 115:16271635.15. Kharitonenkov A, et al. (2007) The metabolic state of diabetic monkeys is regulatedby broblast growth factor-21. Endocrinology 148:774781.16. Xu J, et al. (2009) Fibroblast growth factor 21 revers

49、es hepatic steatosis, increasesenergy expenditure, and improves insulin sensitivity in diet-induced obese mice.Diabetes 58:250259.17. Kharitonenkov A, et al. (2008) FGF-21/FGF-21 receptor interaction and activation isdetermined by betaKlotho. J Cell Physiol 215:17.18. Kurosu H, et al. (2007) Tissue-

50、specic expression of betaKlotho and broblast growthfactor (FGF) receptor isoforms determines metabolic activity of FG19. Ogawa Y, et al. (2007) BetaKlotho is required for metabolic activity of broblastgrowth factor 21. Proc Natl Acad Sci USA 104:74327437.20. Badman MK, et al. (2007) Hepatic broblast

51、 growth factor 21 is regulated byPPARalpha and is a key mediator of hepatic lipid metabolism in ketotic states. CellMetab 5:426437.21. Glman C, et al. (2008) The circulating metabolic regulator FGF21 is induced byprolonged fasting and PPARalpha activation in man. Cell Metab 8:169174.22. Inagaki T, e

52、t al. (2007) Endocrine regulation of the fasting response by PPARalpha-mediated induction of broblast growth factor 21. Cell Metab 5:415425.23. Atherton PJ, et al. (2005) Selective activation of AMPK-PGC-1alpha or PKB-TSC2-mTOR signaling can explain specic adaptive responses to endurance or resistan

53、cetraining-like electrical muscle stimulation. FASEB J 19:786788.24. Rodgers JT, et al. (2005) Nutrient control of glucose homeostasis through a complexof PGC-1alpha and SIRT1. Nature 434:113118.25. Terada S, et al. (2002) Effects of low-intensity prolonged exercise on PGC-1 mRNAexpression in rat ep

54、itrochlearis muscle. Biochem Biophys Res Commun 296:350354.26. Wang H, Qiang L, Farmer SR (2008) Identication of a domain within peroxisomeproliferator-activated receptor gamma regulating expression of a group of genescontaining broblast growth factor 21 that are selectively repressed by SIRT1 inadi

55、pocytes. Mol Cell Biol 28:188200.27. Estall JL, et al. (2009) PGC-1alpha negatively regulates hepatic FGF21 expression bymodulating the heme/Rev-Erb(alpha) axis. Proc Natl Acad Sci USA 106:2251022515.28. Bordone L, et al. (2007) SIRT1 transgenic mice show phenotypes resembling calorierestriction. Ag

56、ing Cell 6:759767.29. Sapkota GP, et al. (2001) Phosphorylation of the protein kinase mutated in Peutz-Jeghers cancer syndrome, LKB1/STK11, at Ser431 by p90(RSK) and cAMP-dependentprotein kinase, but not its farnesylation at Cys(433), is essential for LKB1 to suppresscell growth. J Biol Chem 276:194

57、6919482.30. Potthoff MJ, et al. (2009) FGF21 induces PGC-1alpha and regulates carbohydrate andfatty acid metabolism during the adaptive starvation response. Proc Natl Acad SciUSA 106:1085310858.31. Wente W, et al. (2006) Fibroblast growth factor-21 improves pancreatic beta-cellfunction and survival

58、by activation of extracellular signal-regulated kinase 1/2 andAkt signaling pathways. Diabetes 55:24702478.32. Ramsey KM, Mills KF, Satoh A, Imai S (2008) Age-associated loss of Sirt1-mediatedenhancement of glucose-stimulated insulin secretion in beta cell-specic Sirt1-overexpressing (BESTO) mice. Aging Cell 7:7888.33. Koo SH, et al. (2004) PGC-1 promotes insulin resistance in liver through PPAR-alpha-dependent induction of TRB-3. Nat Med 10:530534.Z

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