腹水抗体制备一般流程

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1、腹水抗体制备(实验室级别)2012-8-27一、实验原理:将稳定分泌单抗的细胞株,通过扩大培养,接种于Balb/c 小鼠腹腔内,使其以腹水瘤形式在小鼠腹腔内增殖,从而得到大量含单抗的腹水。二、实验材料:药品:血清培养基、液体石蜡、生理盐水仪器:电热恒温水浴箱、 CO2培养厢、超净工作台、低速自动平衡离心机三、制备步骤:1.打石蜡在细胞培养前两周,取 8 周-10 周的 Balb/C 小鼠,按每个细胞株注射 3 只,1ml/只,以促进小鼠肠道蠕动,进行分笼,写好标记,十天后准备注射细胞;2.杂交瘤细胞复苏与扩大培养(1) 12 孔细胞培养板,每孔中加入的细胞培养液约 2ml。(2) 按冻存细胞的

2、液氮罐位置,取出冻存的细胞管,在 37水浴箱中搅动 1min 左右,快速融化冷冻的杂交瘤细胞。(3) 将融化的细胞吸入 5mL的细胞培养液中,尽量收集细胞,装入 EP管,然后平衡 EP管, 800rpm,8min,进行离心。(4) 将离心好的细胞上清液吸除,吸取 3mL细胞培养液混匀沉淀细胞,将该细胞液吸出,按 1ml/ 孔混匀到相应培养板孔中, 显微镜下观察复苏后的细胞数量,生长形态和背景是否有污染及杂质,然后放入细胞培养厢中进行孵育。3.杂交瘤细胞收集与注射(1)待细胞处于对数生长期,即可收集。吸取上清 1ml 后,吹打细胞,使贴壁细胞脱落,然后收集到 15ml 离心管中, 800rpm,

3、 8min 离心,(2) 吸取离心上清液 (冻存备用 ),然后每管加入 4ml 生理盐水,混匀后,同样条件再次离心,弃去上清液,每管再加人 2-3ml 生理盐水,混匀后吸入 5ml 注射器,按约 1ml-0.5ml/只,注射小鼠腹腔。从注射后起一周后,每天注意观察小鼠腹腔隆起程度和小鼠生命状态,防止小鼠死亡。4.腹水收集(1) 取经过免疫的腹部隆起的小鼠,颈部处死,用消毒酒精浸泡,用剪刀剪开腹部上皮,撕开腹部皮肤,挑起腹腔膜,剪开,注意不要全部剪开,将吸管插进去,挤压腹水后,再吸取腹水到 15ml 离心管中, 800rpm,30min 离心,收集油脂层一下淡黄液体,即为腹水抗体。(2) 正常情

4、况下,每只小鼠可收集 2-3ml 腹水。抗体浓度 0.5-5mg/ml 。按 1ml/ 管,用 1.5mlEP 管分装后放 -80 冻存。5.抗体纯化(1) ProteinG 亲和层析柱准备 : 填料( 1ml)装柱后,超纯水流洗 3-5 个柱床体积以洗掉乙醇,用平衡缓冲液洗 5-10 个柱床体积平衡柱子。(2) 上样:将样品上柱,上柱前需将样品超滤浓缩至1ml 上柱。(3) 洗涤:平衡缓冲液洗 5-10 个柱床体积,直至洗涤液用检测液检测无明显显色反应为止。(4) 洗脱:洗脱缓冲液洗脱吸附在填料上的目标抗体,收集洗脱峰 (1-6 管) ,洗脱液立即用中和缓冲液中和到中性。(5) 平衡层析柱:立即用 5-10 个柱床体积平衡缓冲液平衡柱子到中性。(6) 再生:再生缓冲液流洗 2-3 个柱床体积。(7) 保存:先后用平衡缓冲液、 20%乙醇分别流洗 3-5 个柱床体积。层析柱内保留适当体积的 20%乙醇,置于 48保存。

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