植物组织内可溶性蛋白质的提取和含量测定
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1、植物组织中可溶性蛋白质含量的测定(福林酚试剂法)一、原理福林(Folin)酚试剂法结合了双缩脲试剂和酚试剂与蛋白质的反应,其中包 括两步反应:第一步是在碱性条件下,与铜试剂作用生成蛋白质铜络合物;第 二步是此络合物将磷钼酸、磷钨酸试剂还原,生成磷钼蓝和磷钨蓝的深蓝色混合 物,颜色深浅与蛋白含量成正相关。在650nm比色测定的灵敏度比双缩脲法高 100倍。由于肽键显色效果增强,从而减少了因蛋白质种类引起的偏差。该法适 于微量蛋白的测定(范围为5100g蛋白质)。二、材料、仪器设备及试剂(一)材料:各种植物材料(二)仪器设备:1. 722 分光光度计;2. 离心机;3. 恒温水浴;4. 定量加样
2、器;5. 冷凝回流装置一套;6. 研钵;7. 离心管;8. 刻度移液管;9. 微量滴 定管;10. 试管等;(三)试剂: 标准蛋白质溶液:称取 25mg 牛血清蛋白,溶于 100ml 蒸馏水中, 使终浓度为250g/ml ;试剂甲;试剂乙。三、实验步骤(一)标准曲线的绘制1. 取 18X200mm 试管 7 支,1 7 编号,分别加入 0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml标准蛋白质溶液,用蒸馏水补足1ml,使每管含蛋白量分别为0、25、50、 100、 150、 200、 250 g/ ml。2. 用定量加样器给每支试管中加入5ml甲液,混匀,于30C下放置10min。3.
3、再向试管中喷射加入0.5ml乙液,立即振荡混匀,在30C下准确保温30min。4. 以不加标准蛋白的1号管为空白,在650nm下用1cm光径的比色皿测定吸光 度。以标准蛋白浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线。(二)样品的测定称取鲜样0.8g,用5ml蒸馏水或缓冲液研磨成匀浆后,定容25ml过滤,取滤液 1.0ml于试管中,然后重复标准曲线绘制中的24步骤,以空白管调零,测定 吸光度。根据吸光度查标准曲线,求出样品中的蛋白质含量。四、结果计算:样品中蛋白的含量(mg/g)=CXV / (V XFWX1000)Ts式中:C 查标准曲线值(g) ; VT 提取液总体积(ml) ; FW样品鲜重(g); Vs 测定时加样量(ml)粗蛋白量()=蛋白氮含量X6.2
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