石蜡包埋组织的dna提取及其应用

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1、石蜡包埋组织的DNA提取及其应用近io年来，现代分子生物学技术越来越广泛地被用于人类疾病研究的诸领域，为了解病理状态下基因组DNA的变化积累了新资料。目前认为，人类基因组并非人们想像的那样稳定，诸如基因重排、扩增、缺 失，突变和DNA甲基化类型改变等时有发生，这些改变对于基因表达和调控，以及疾病过程的发展与转归等方面均具有重要意义。医院病理科档案中积存的大量石蜡包埋组织，是一个可靠的分子生物学研究的材料来源。在石蜡切片 上进行原位杂交或原位 PCR分析的分子生物学方法，是免疫细胞化学技术的重要延伸。通过对 DNA或m RNA分析亦可直接证实或补充免疫细胞化学的发现。这些对形态学家较为熟悉的原位

2、分子生物学技术，本 节 不再赘述。Goelz（1985）和Dubeau等（1986 ）成功地从蜡块中提取出高质量的DNA ,完全可以满足某些肿瘤分子生物学研究的需要，结束了 DNA研究依赖于新鲜或冰冻组织和细胞的历史，而且可以广泛地应用于大宗病例的回顾性研究，对肿瘤发生的分子机制的探讨，诊断与鉴别诊断研究和患者预后评估等方 面均具有重要价值。本节重点讨论石蜡包埋组织 DNA提取的方法学及其潜在的应用前景。一、石蜡包埋组织DNA提取的基本方法从石蜡包埋组织中提取 DNA的基本步骤，是在常规 DNA提取方法的基础上改良和演变而来。Goelz等（ 1985）最先提出的石蜡包埋组织 DNA提取技术（表

3、18-5）,是用机械的方法破碎组织，切除多余的 石蜡，直接进入含SDS和高浓度蛋白酶K （1mg/ml ）的提取缓冲液加温孵育，然后进行苯酚和氯仿抽提。 所彳t DNA虽不完整，但可被限制性内切酶切割，因而适于点杂交，印迹杂交等多种分子生物学实验。Dubeau等（ 1986）在上述方法上作了改进。首先通过组织切片用二甲苯脱蜡，保证了组织的完全破碎，使 细胞与消化液充分接触，使DNA释放和蛋白去除更加完全；其次通过两步消化的方法，将不适于做分子杂 交的降解的DNA小片段去除，仅保留那些可螺旋化的完整的DNA大分子，从而提高了 DNA质量，适于做Southern印迹杂交分析。Moerkerk等（1

4、990 ）对上述两种方法进行了比较，发现两种方法所取得DNA之点杂交结果一致，非螺旋化 DNA亦不影响杂交分析。表18-5 Gpelz氏DNA提取方法的主要步骤1 .切除多余石蜡，暴露组织2 .将组织切碎（最大径 0.5mm ）,称重；3 .溶于TE9提取液（组织20kb 。这除与固定剂、固 定时间等因素有关外，可能的原因还有： 组织从外科切除到固定之间的时间长短不一。当组织未固定或固定不充分时， 核酸酶可自由作用； 不同肿瘤中核酸酶的水平不一， 其在固定前或固定后均不发挥作用； 蜡块贮存的时间长短不一。虽然从不同贮存时间的蜡块中提取的 DNA 大小无绝对区别， 但新近的蜡块比贮存 10 年以

5、上的标本所获得的 DNA 分子量大。可能蜡块中仍存在导致DNA 降解的因素。组织的浸蜡和包埋温度过高或时间过长，均可导致DNA 变性，而产生单链DNA 片段。单链 DNA 不能被限制性内切酶所消化，可导致电泳时泳动速率变慢。三、提高 DNA 提取质量的方法1 蜡块的选择从福尔马林固定的组织标本中未能提出完整的高分子量DNA 的重要原因之一，是应用了固定不充分的组织。因此，在 DNA 提取前应检查组织切片。如果有自溶、退变或组织结构不清，大片出血等改变的蜡块不能用；若有明显坏死存在的蜡块，最好不用或将坏死部分切去后再用。尽可能地选用新近标本，缓冲福尔马林、丙酮和乙醇固定者最佳。2 DNA 提取方

6、法学的改善为了提高石蜡包埋组织DNA 提取的质量和效益， 人们从不同方面进行了探索。 其中在 DNA 提取液的改良， 蛋白酶的消化时间和 DNA 纯化等问题上取得了进展。 DNA 提取液主要含 SDS 和蛋白酶 K 的 TE 缓冲液。固定和包埋组织由于化学修饰作用，使得 DAN 与蛋白质不易分离。因此，必须增加SDS和蛋白酶K的浓度和作用时间：SDS可增至1%2%,蛋白酶K200500“ g/ml ,最高可达1mg/ml ;作用时间一般为24天，最长可达7天。蛋白酶K可分次加入，并注意不时震摇，使酶与组织充分接触。 Koshiba 等发现， 利用 Goelz 等和 Dubeau 等提出的 DN

7、A 提取方法， 不能够得到令人满意的完整 DNA 。尿素和胍（ guanidine ）是 DNA 自然和人工交联最有力的剥脱剂， 2-巯基乙醇可干扰二硫键，促进蛋白变性。作者对 DNA 提取液进行了改良，加入高浓度（ 4mol/L ）尿素和2-巯基乙醇。应用此缓冲液，有效地从包埋组织中获得高质量DNA 。 DNA 释放率对于不同的组织类型是有差异的，取决于组织细胞密度和细胞外间质的多少。对于细胞丰富、含有很少间质的组织（例如脾脏），通过 24h 孵育 80% 以上 DNA 可释放出来；相同量的 DNA 释放对于富含致密间质的子宫肌瘤则需要6 天时间；转移性畸胎瘤含中等细胞密度和疏松的间质， D

8、NA 释放率亦为中等。由此可见，对不同类型的组织DNA 提取，蛋白酶 K 的孵育时间可作适当调整，以求最大量地获取大分子DNA 。此外，对于Dubeau 等提出的 DNA 提取过程中分次消化步骤的必要性，也有人提出异议。因为低、中分子量的核酸存在对限制性内切酶的消化和杂交不起作用。 Dubeau 等发现，不适于进行酶切反应和杂交研究的化学修饰的 DNA ，可通过搅起完整的 DNA 而被动除去，因而强调了螺旋化（ spooling ）在 DNA 纯化中的重要性。该作者还发现延长组织固定时间的影响之一就是减少了可螺旋化 DNA 的量，杂交分析显示，螺旋化 DNA 杂交信号强，而未螺旋化 DNA 信

9、号减弱。因此，增加DNA 螺旋化可提高提取DNA 质量和杂交效率。但是， Moerkert 等认为未螺旋化 DNA 不影响进行点杂交分析。3 避免DNA 机械性损伤福尔马林固定和石蜡包埋使组织变得坚韧，很难达到匀浆的效果。经常的做法是将组织切成35Mm薄片，使每一细胞都被切开。但是，我们认为切片太薄，容易过多地将DNA切断， 影响高分子量DNA的获得率。最好是采用1520Mm的厚切片。高浓度蛋白酶K消化24天，使能达到 细胞充分破碎、蛋白充分消化的目的。并尽可能避免机械性匀浆过程造成的 DNA 剪切。此外， 在 NDA 释放出来以后的提取过程中， 应尽可能轻柔操作， 避免过多地移管。若必需移管

10、时应选用大口吸管。尽可能避免人为的 DNA 剪切。纯化 DNA 用 TE （pH8.0 ）溶解放4保存即可，若短期不用时应 -20 冻存，但切忌反复冻融，以免DNA 降解。四、石蜡包埋组织DNA 分析的方法学由于 DNA 提取方法的改善和 DNA 质量的提高，几乎所有基因分析的技术均可用于石蜡包埋组织，但目前分子病理学研究的常用方法是点杂交、 Southern 印迹杂交和多聚酶链反应（ PCR ）。1 点杂交鉴于包埋组织 DNA 有一定程度的降解，因而点杂交被认为是一种简便、快速和实用的方法，特别适用于较大样本的筛选。Dyall smith等（ 1988 ）采用未经抽提的蛋白酶消化产物直接点膜

11、，进行点杂交分析，在 3 周内对 200 多病例进行筛选，对阳性病例和很难解释的弱阳性斑点，再进行原位杂交等方法作进一步证实。2 Southern 印迹杂交 Southern 印迹杂交是经典的基因分析技术，已被广泛地用于基因突变，扩增、重排和丢失等许多方面的研究。石蜡包埋组织的 Southern 印迹杂交分析有以下几个方面值得注意：（ 1）当所分析的酶切片段长为300500bp时，包埋组织DNA杂交信号强度只有相同量标准DNA的10%85% o信号强度与原始 DNA大小呈正相关，最小片段DNA产生最弱的信号。（ 2 ）包埋组织 DNA 所致的非特异性背景杂交比标准DNA 为明显。这种背景杂交的

12、产生可能是由于不包含到分析基因中两个限制性内切酶识别位点的小片段DNA 存在。（ 3 ）由于背景杂交明显使得信号模糊，信/噪比缩小。根据Goelz 的经验，约有25% 石蜡包埋组织不适于作 Southern 印迹杂交。（ 4 ）某些限制性酶切片段的电泳速度比标准DNA 稍迟缓。可能的原因是DNA 直接或间接的化学改变使某些限制性酶切位点失活和/或单链DNA 存在。（ 5 ）由于小片段 DNA 的存在，故用作杂交分析的 DNA 量应适当增加，以增强杂交信号。3 PCR 分析 PCR 技术是近年来分子生物学技术的典范， 已被广泛地用于分子病理学的各个领域。 此 技术不但特异性好和敏感性高，而且简便

13、、快速、模板DNA 要求不高，特别适于石蜡包埋 DNA 的分析。用于 PCR 扩增的 DNA 提取比较简单， 既使少量 DNA 样品亦能产生大量特异性DNA 拷贝。 已被成功地用于各代木乃伊 DNA 的分析，小至1mm2 的 HE 染色切片提取的 DNA 亦可获得满意的扩增，并可用于诊断。但是，为了提高PCR 的敏感性和可重复性，模板DNA 应尽可能地纯化，除去提取物中某些抑制 PCR 反应的成份。此外，切片过程中要注意防止污染，以免出现假阳性。最近， Davis 等（ 1993 ）对 PCR 产物进行单链构型多态性（ SSCP ）分析，可以提高PCR 敏感性 5倍以上。 SSCP 分析是应用

14、单链DNA 在非变性聚丙酰胺凝胶上电泳， 根据序列的不同所产生的构型差异来分析 PCr 产物。此分析能检测出小到一个碱基的差异，因而可被广泛地用于研究点突变和基因多态性。此外， 在包埋组织的DNA 提取中往往发现有RNA 的存在。 这些未加任何保护而免受降解的 RNA ， 不可能是完整的序列。 然而， 此发现提示用福尔马林固定的组织亦可作为 Northern 印迹杂交分析的可能材料 来源。五、分子病理学研究中的应用1 基因重排分析与淋巴瘤的诊断分子生物学技术在肿瘤诊断中的应用，目前仅限于淋巴瘤/白血病。淋巴瘤以具有特异性抗原受体基因重排的单一性细胞增殖为特征。因此，克隆性免疫球蛋白（Ig）和T

15、-细胞受体 （ TCR ） 基因重排的检出可作为淋巴瘤诊断的重要指标， 这在国外许多实验室已成为常规诊断技术。Southern 印迹杂交和PCR 都已被成功地用于基因重排分析。此技术在下列病变的诊断和鉴别诊断中特别有意义： 恶性淋巴瘤与反应性淋巴组织增生的鉴别。后者为多克隆性细胞增生，不能检出或扩增出克隆性基因重排序列；T和B细胞性肿瘤的区分：PCR3基因重排支持T细胞源性，而Ig重链基因则为B 细胞源性。然而，一部分病例显示Ig 和 TCR 基因双重排。在这种情况下，要结合其他基因分析。若同 时伴有 Ig 轻链 （ K 或人） 基因重排则支持 B 细胞肿瘤； 同时伴有 TCRr 或 TCRs

16、 基因重排则为 T 细胞肿瘤。 另外，也可结合免疫分型。双基因重排的肿瘤往往一种基因为不完全重排、不伴有相应的抗原受体表达，故免疫表型上往往是单一的。T细胞性淋巴瘤的诊断，T细胞肿瘤形态变化多端、免疫表型上无克隆性标记，故对此类淋巴瘤均有必要进行基因分型。T细胞优势性B细胞淋巴瘤。这种肿瘤在形态和免疫表型上很难建立诊断。 残留病变监测和复发的早期诊断。此技术还可用于识别骨髓的累及、治疗或骨髓移植后残余病变的检测，以及形态学上不能察觉的早期复发的诊断。 /P某些淋巴瘤/ 白血病所伴有的特异性染色体易位是另一种类型的基因重排标记。例如滤泡型淋巴瘤中常出现的 t （ 14 ： 18）易位， Burk

17、itt 氏淋巴瘤的 t（ 8 ： 14 ）、 t（8： 2）和 t（8 ： 22）易位，以及慢粒或急淋白血 病中常见的 t （ 9： 33 ）易位。因上述基因重排在淋巴瘤中出现频率不高，故诊断应用价值不大。2 癌基因与抗癌基因的研究分子生物学在肿瘤病理学中另一热点是癌基因和抗癌基因的研究。自从1981 年 Weinberg 等首先报道人癌基因分离成功以来， 至今已有 50 多种癌基因被发现， 这些基因普遍存在 于各种生物细胞中，对于细胞的生长和分化起着重要作用。在正常情况下，其表达受到严格调控；病理状态下，癌基因活化，表达失控，使细胞原有的正常生物学性状发生改变，从而导致细胞癌变。据报道，癌基

18、因的结构和功能改变见于造血系统、乳腺、粘膜鳞状上皮、前列腺、肺、肾、消化道、膀胱、卵巢、消 化腺、神经系统和软组织等肿瘤。另一类基因称抗癌基因或抑癌基因，现已发现的有p53、 Rb、 DCC 、 WT1 和 NF1 等。其蛋白产物的功能是阻滞癌基因所编码多肽的活性。因此，如果抗癌基因发生突变或功能丧失，异常的癌基因产物表达失控，而诱发细胞转化为肿瘤。此现象为见于视网膜母细胞瘤、子宫内膜、结肠、食管等各部位的肿瘤。目前，对人类肿瘤中癌基因和抗癌基因的检测，已经在肿瘤的分类、发病机理、肿瘤生物学行为和预后的关系等方面与肿瘤临床密切结合起来，并正在逐渐地应用于肿瘤的诊断、鉴别诊断和治疗。（ 1 ）癌

19、变机理的研究：癌基因活化和抗癌基因失活在人类肿瘤的发生发展过程中起重要作用。已有大量证据表明，至少需要两种以上的癌基因活化的协同作用才能使正常细胞发生恶性转化。目前研究发现绝大多数肿瘤有一种以上的癌基因过度表达，一种癌基因对靶细胞的永生化起重要作用，而另一种则促进细 胞的永生化。（ 2 ） 肿瘤生物学待业和预后的研究： 某些癌基因突变及其产物的过度表达与癌细胞的分化和恶性程度有关。目前研究最多的是 c prbB 2与乳腺癌的关系。许良中等（1992 ）发现，浸润性导管癌中 c e rbB -2阳性表达率达67%以上，单纯癌阳性率为26.5% ,而全部乳癌良性病变皆阴性。我们的研究发现，c -e

20、rbB e 过度表达的乳腺癌预后不良，Schimmelpenning 等（ 1992 ）也报告伴有c prbB2扩增的导管内癌易于发生周围浸润。此外， ras P21 在乳腺癌中的表达也有上述趋势。（ 3 ）辅助诊断和鉴别诊断： bc1-2 基因已被用于滤泡型淋巴瘤与反应性滤泡增生的鉴别诊断，前者阳性表达率在 80% 以上，而后者几乎为阴性； ras 癌基因突变或过度表达有助于甲状腺乳头状癌、乳腺导管癌、结肠腺癌等肿瘤的诊断；小细胞肺癌常伴有n myc突变。（ 4 ）癌细胞的组织发生： paget 氏病可分乳腺外（ EPD ）和乳腺内（ MPD ）两种。有关paget 细胞的起源问题仍有争议。

21、许良中（1993）观察了 c -erbB -2和p53在77例EPD和10例MPD中的表达，认为 MPD 中的 paget 细胞是来源于腺癌细胞而不是表皮的角质层细胞。 EPP 中的 paget 细胞也来源于腺癌细胞，但这种腺癌细胞与MPD 中的腺癌细胞不同，因为两者基因表达不同。3 遗传病的基因诊断遗传病的回顾性家族调查，可通过石蜡包埋组织完成。Mueller 等描述 1 例怀疑囊性纤维化（ CF ）的死婴，石蜡包埋组织是唯一的材料来源。应用 CF 基因标记引物，对患儿和其父母的DNA 分别进行PCR 扩增。扩增产物用相应内切酶消化并检测限制性片段多态性。结果显示父母和患儿在同一位点上有意义

22、，表明患儿遗传有突变型CF 基因，最后证实了 CF 的诊断。另一种常见的遗传病-肌营养不良症（ DMD）,是由Dystrophin基因的DNA序列畸变引起。Forstboefel 等用该基因的已知编码DNA 序列，从一死婴尸检组织中得到的 DNA 进行选择性PCR 扩增。结果发现 DMD 基因的一关键部分缺失，进而证实了 DMD 的诊断。同样可通过亲代DNA 分析，区分遗传性或散发性缺失。4 病理微生物的检测核酸杂交和PCR 技术对病原微生物的检测亦具有独到之处，除其特异性和敏感性极高外，还可适用于石蜡切片等多种材料，且可避免因培养造成的病原扩散。特别是一些原位杂交和 PCR 诊断性试剂盒的问

23、世，使此项检测更加简便易行。因此，分子生物学将是传染病实验室诊断技术的发展方向。这方面的应用已有很多报道，本节不再赘述。5 .组织来源的鉴定PCR可用于选择性扩增一部分HLa QQa基因，这部分是人类基因组中高度多肽性的位点。 DNA 序列微小的个体差异，可被特异性cDNA 探针区分。此基因在人群中的正常变异是有图谱的，故可将其用作 “基因指纹 ”来验证组织来源。在日常工作中偶尔遇到标本的标记错误，当观察组织切片，发现与临床资料不匹配时才被发现。Shibata等通过分析石蜡标本DNA中HLa - DQa位点解决了这一难题。另一高度多肽性的基因-低密度脂蛋白受体基因，亦可同样用于标本的鉴定。Du

24、beau 等发现提取 DNA 的甲基化类型是恒定的，包埋组织仍保留其原有的特异性甲基化特征，籍此可有助于识别某些肿瘤的起源组织。综上所述，石蜡包埋组织DNA 的提取扩展了分子生物学技术在临床上的应用范围。虽然现在回顾性DNA 分析仅用于确定少数特异性诊断，但随着越来越多的感染性病原基因、特异性肿瘤基因和遗传病基因的识别和克隆，相信不远的将来基因诊断的应用范围会进一步拓宽，分子杂交等基因分析技术将会在病理学诊断和研究中发挥越来越重要的作用。Word是学生和职场人士最常用的一款办公软件之一，99.99% 的人知道它，但其实，这个软件背后，还有一大批隐藏技能你不知道。掌握他们，你将开启新世界的大门。

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